《Journal of Agricultural and Food Chemistry》:Comparative Evaluation of Total Ergot Alkaloids Determination by ELISA and UHPLC-MS/MS in Wheat: Implications of Cross-Reactivity and Matrix Effects
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麦角生物碱(ergot alkaloids, EAs)是发现于谷物中的有毒次级代谢产物,需要有效的监测策略。该研究评价了一种商业化酶联免疫吸附测定(enzyme-linked immunosorbent assay, ELISA)用于总麦角生物碱的检测,并与经
麦角生物碱(ergot alkaloids, EAs)是发现于谷物中的有毒次级代谢产物,需要有效的监测策略。该研究评价了一种商业化酶联免疫吸附测定(enzyme-linked immunosorbent assay, ELISA)用于总麦角生物碱的检测,并与经过验证的超高效液相色谱-串联质谱(ultrahigh-performance liquid chromatography-tandem mass spectrometry, UHPLC-MS/MS)参考方法进行了比较,所用样品为天然污染的小麦和硬质小麦样品。除了方法比较之外,该研究还考察了交叉反应性和基质效应,以解释免疫测定与色谱测定之间的差异。ELISA表现出良好的重复性和校准稳定性,跨越不同试剂盒和分析日;但相对于UHPLC-MS/MS存在系统性偏差,ELISA结果通常低估色谱 totals。使用认证参考物质和 proficiency test 材料对ELISA准确度的评估显示出不一致的偏差,包括偶尔的高估。基于半数抑制浓度(half-maximal inhibitory concentration, IC50)的ELISA交叉反应性揭示了化合物依赖性和基质依赖性的免疫化学效应,解释了所观察到的差异。这些发现支持将ELISA作为高通量筛选和优先级排序工具,同时确认对于监管目的而言,确定性定量需要UHPLC-MS/MS确证。
该研究发表于《Journal of Agricultural and Food Chemistry》,旨在系统评价商业化酶联免疫吸附测定(ELISA)在小麦总麦角生物碱检测中的性能,并以超高效液相色谱-串联质谱(UHPLC-MS/MS)作为参考方法,深入探讨免疫测定与色谱方法产生差异的机理。麦角生物碱是由麦角菌属(Claviceps)真菌产生的吲哚类衍生物类毒素,主要感染黑麦、小麦、大麦、燕麦和小黑麦等谷物作物的花序,以硬化菌核(sclerotia)取代发育中的籽粒。尽管农业实践改进和谷物清理降低了可见麦角菌核的检出率,但麦角生物碱仍可在无可见菌核的情况下残留于谷物及其制品中,因为在收获、处理、清理或磨粉过程中菌核可能破碎成微小颗粒,继续对食品和饲料安全构成威胁。麦角生物碱具有共同的四环麦角灵骨架,包括麦角新碱、麦角胺、麦角生碱、麦角克碱、麦角隐亭碱和麦角柯宁碱及其相应的C-8差向异构体(即-ine型和-inine型)。C-8位的差向异构化可在真菌代谢及样品提取、储存和分析过程中发生,使准确定量复杂化。膳食暴露于高水平麦角生物碱与血管收缩、缺血、神经紊乱和幻觉等统称为麦角中毒的健康效应相关。为此,欧盟已根据(EU) 2021/1399号法规(后并入(EU) 2023/915号法规)对谷物研磨制品中12种麦角生物碱之和设定了最大限量,这增加了对可靠分析方法以支持常规监测和执法的需求。
UHPLC-MS/MS因其灵敏度、选择性及分辨差向异构体形式的能力而被视为麦角生物碱确证检测的参考技术,但其资源密集型特点限制了在高通量筛选或快速决策场景中的应用。相比之下,ELISA具有分析时间短、流程简化和单样本成本低的优势,常作为色谱分析的补充工具。然而,与其他受监管毒素不同,麦角生物碱ELISA的商业化供应有限,目前Randox Food Diagnostics Ergot Alkaloids ELISA是唯一广泛销售的、可定量12种主要麦角生物碱总和的多孔板ELISA,这与欧盟法规中用于设定最大限量的分析物范围一致。研究人员假设,商业化ELISA的测定结果受基质效应和抗体交叉反应性影响,导致与UHPLC-MS/MS产生系统性差异,因此开展此项综合性能评价。
该研究的主要关键技术方法包括:(1)样本来源:102份来源于加拿大谷物委员会(Canadian Grain Commission, CGC)货物监测计划的小麦和硬质小麦出口货物样品,采集于2018、2021和2022年,涵盖从低于检出限至约800 μg/kg的广泛浓度范围;另有6份小麦样品用于重复性、提取性能等实验,3份认证黑麦参考物质和2份能力验证样品用于准确度评价。(2)UHPLC-MS/MS参考方法:采用经CGC验证的方法,以10 g样品用乙腈/碳酸铵水溶液(84:16, v/v)提取,经BEH C
18色谱柱分离,正电喷雾离子化多反应监测模式检测,以二氢麦角胺(dihydroergotamine)为内标,定量限低至μg/kg级别。(3)ELISA方法:采用Randox竞争法ELISA,按制造商协议以2.5 g样品用含0.1%甲酸的甲醇/水(60:40, v/v)提取,100倍稀释后用酶标仪于450 nm测定吸光度,以四参数逻辑回归(4PL)拟合校准曲线。(4)交叉反应性评价:基于IC
50方法,以麦角胺为参考生物碱,分别在溶剂和空白小麦基质中对12种麦角生物碱进行测定,计算相对交叉反应性。(5)统计方法:采用线性回归和Bland-Altman分析评价ELISA与UHPLC-MS/MS的一致性,运用t检验、方差分析(ANOVA)和Levene检验进行实验组间比较。
**ELISA精密度与程序因素评价**
研究人员首先评价了ELISA的分析精密度和程序稳健性。使用两个独立ELISA试剂盒生产批号对五份天然污染小麦样品(约46–360 μg/kg)进行分析,批间差异无统计学意义(p > 0.05),表明在测试条件下两批试剂盒产生可比的响应。在提取彻底性方面,单次提取与两次序贯提取的结果无统计学差异(p > 0.05),差异通常在±10%以内,表明单次提取方案足以回收免疫活性组分。然而,提取液稳定性对ELISA响应有显著影响:小麦提取液在5 °C储存24小时后重新分析,五份样品的测定浓度显著降低(p < 0.05),降幅约15–35%,提示应在提取后尽快分析或验证提取液稳定性。在样品量效应方面,将测试样品量从2.5 g增至20 g未改变平均ELISA浓度或方差(p > 0.05),Levene检验证实各质量水平间方差无显著差异,表明在此范围内提取溶剂体积和后续稀释步骤足以缓冲样品量差异。
**中间重复性与校准稳定性**
通过22个分析日对室内小麦参考物质(约75 μg/kg)的重复测定评价中间重复性。ELISA校准曲线表现出极佳的拟合优度,决定系数(R
2)为0.997–0.999,证实4PL模型能充分描述竞争结合行为。22次运行的中间精密度约为6.0%相对标准偏差(RSD),此变异性反映了板间差异、校准曲线制备、孵育时间和温度控制等操作因素以及样品异质性和提取重复性等上游来源的综合贡献。对于多日应用的筛选方法,该变异性水平可接受,与免疫测定法常见的5–15%日间RSD范围一致。
**认证参考物质和能力验证样品的准确度评价**
使用3份认证黑麦参考物质和2份小麦能力验证样品评价准确度。结果发现,ELISA结果与认证或指定值之间存在可变的吻合度,所有参考材料的ELISA结果范围为认证值的58%至121%,表明方法偏差在不同基质和浓度水平间存在显著差异。对于低水平黑麦认证参考物质(95.3 ± 4.7 μg/kg),ELISA均值约55 ± 8 μg/kg,低估约42%;中水平认证参考物质(508 ± 14 μg/kg)的ELISA结果(491 ± 89 μg/kg)仅偏差–3%;最高水平(832.5 ± 46 μg/kg)则低估约19%。值得注意的是,最高浓度水平的相对标准偏差超过70%,远低于低浓度水平的<15%,提示变异性随浓度不成比例增加。小麦能力验证样品出现高估(121%和>144%),表明当麦角生物碱图谱与试剂盒校准基础不同时可能产生正偏差。这些模式支持ELISA适于识别需关注的样品,但不能假设与UHPLC-MS/MS的数值等同性。
**ELISA与UHPLC-MS/MS结果比较**
以UHPLC-MS/MS作为化学参考方法,对102份小麦和硬质小麦货物样品进行比较。线性回归分析显示ELISA与UHPLC-MS/MS结果呈正相关,但回归斜率显著偏离1,ELISA结果系统性低于UHPLC-MS/MS值,约低估2倍。Bland-Altman分析确认了这一比例偏差,显示ELISA与UHPLC-MS/MS结果间存在持续的负平均差异。重要的是,分歧幅度未随浓度随机增加,而是反映系统性偏移,表明差异源于方法响应特性的根本差异而非分析不精密度。这种系统偏差显著大于ELISA质量控制物质的中间精密度,支持该分歧反映方法响应差异而非ELISA重复性不足的解释。尽管存在偏差,强相关性表明ELISA对麦角生物碱浓度变化提供一致的相对响应,适用于样品排序和识别需确证分析的样品。研究人员强调,ELISA与UHPLC-MS/MS之间存在分析一致性(agreement)但不具备分析等效性(equivalence)。
**ELISA响应中的交叉反应性与基质效应**
研究人员采用基于IC
50的交叉反应性方法系统评价了ELISA对单个麦角生物碱的特异性,以麦角胺为参考化合物,分别在溶剂和小麦基质中评估。溶剂中交叉反应性差异显著:麦角新碱极高(56,854%),麦角生碱中等(129%),麦角胺定义为100%,麦角隐亭碱(17%)、麦角克碱(4%)、麦角新宁碱(4%)和麦角胺宁碱(21%)等则响应微弱。对应差向异构体对显示明显差异,如麦角生碱/麦角生宁碱(129% vs 7%)、麦角胺/麦角胺宁碱(100% vs 21%)、麦角隐亭碱/麦角隐亭宁碱(17% vs 150%)、麦角克碱/麦角克宁碱(4% vs 90%),表明抗体响应受立体化学构型和侧链结构影响。
当在小麦基质中测试时,多种生物碱的交叉反应性显著增加,增幅强烈依赖于分析物。最极端的是麦角新碱,从溶剂中的56,854%增至小麦基质中的1,825,100%,成为基质中主导ELISA信号的贡献者。麦角隐亭宁碱(14,150%)、麦角克碱(4,043%)和麦角生碱(7075%)也显示强烈基质放大效应。部分分析物在基质中仍保持弱免疫反应性,如麦角新宁碱(33%)和麦角隐亭碱(43%)。差向异构体依赖性响应在基质中更为显著,如麦角隐亭碱/麦角隐亭宁碱(43% vs 14,150%)和麦角新碱/麦角新宁碱(1,825,100% vs 33%)。关键发现是单个生物碱的相对排序在溶剂和基质间发生改变:麦角柯宁碱从溶剂中约900%降至基质中524%,而麦角克碱从4%升至4,043%。这种基质驱动的信号贡献重排而非均匀缩放效应,证实基质效应可根本性地重塑哪些麦角生物碱主导ELISA响应。基质依赖性交叉反应性跨越超过4个数量级(33%至1,825,100%),而溶剂条件下仅4–56,854%。
B/B
0(样品吸光度与空白吸光度之比)对摩尔浓度的作图进一步说明这些效应。溶剂中(图7a),不同麦角生物碱的吸光度比随浓度增加呈 broadly similar 的下降趋势;而小麦基质中(图7b),各分析物在可比浓度下的响应发散显著增大,部分化合物显示明显信号抑制,其他则显示显著放大。这支持"仅凭化学结构不足以预测ELISA行为"的结论。这些基质诱导的免疫测定响应改变归因于分析物可及性、抗体-半抗原相互作用动力学以及与共提取基质组分的非特异性相互作用的变化。
从分析角度看,溶剂-基质对比为ELISA与UHPLC-MS/MS间偏差的观察提供了直接机制解释。虽然UHPLC-MS/MS中也可能存在基质效应(离子抑制或增强),但这些效应可通过内标、基质匹配校准、稀释、净化或标准加入法评估和缓解;相比之下,ELISA基质效应源于抗体-分析物相互作用、分析物可及性和非特异性结合的改变,更难以普遍校正,通常依赖于基质匹配校准、优化提取和稀释、相关基质验证以及确证性色谱分析。
**讨论总结**
该研究提供了一项对商业化总麦角生物碱ELISA的全面评价,以小麦为主要应用基质,并将性能指标与方法行为机制洞察相结合。虽然该ELISA表现出强重复性、校准稳定性和对程序因素(如测试样品量和提取条件)的稳健性,但与UHPLC-MS/MS的系统性差异始终存在。通过将这些差异与化合物特异性抗体交叉反应性和基质依赖性信号调制相联系,该工作阐明ELISA衍生结果反映的是免疫化学加权响应而非化学计量总和。这一区别对于ELISA数据的适当解释至关重要,并支持其在分层分析策略中作为快速筛选工具的使用,同时以UHPLC-MS/MS进行确证定量和监管决策。
综合证据支持在结构化监测计划中部署ELISA,同时明确界定UHPLC-MS/MS确证对监管合规和风险管理的必需情形。研究表明,ELISA与UHPLC-MS/MS的分歧不仅源于加和性与化合物特异性定量之间的差异,还源于基质依赖性交叉反应性对单个生物碱的重加权作用。这意味着ELISA衍生的"总麦角生物碱"不应被解释为与色谱 totals 化学等价。操作层面,提取液储存敏感性、跨谷物类型应用的基质相关性验证,以及阳性ELISA结果须经UHPLC-MS/MS确证的必要性,均在本研究中得到强调。