SLC32A1下调通过介导PAI-1通路缓解肝星状细胞活化与肝纤维化

《Journal of Endocrinology》:Downregulation of SLC32A1 mediates the PAI-1 pathway in alleviating hepatic stellate cell activation and liver fibrosis

【字体: 时间:2026年06月14日 来源:Journal of Endocrinology 3.9

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  肝纤维化(liver fibrosis,LF)是一种进行性慢性肝病,其特征为细胞外基质(extracellular matrix,ECM)过度积聚,而这一过程主要由肝星状细胞(hepatic stellate cells,HSCs)的异常活化驱动。已有研究报道

  
肝纤维化(liver fibrosis,LF)是一种进行性慢性肝病,其特征为细胞外基质(extracellular matrix,ECM)过度积聚,而这一过程主要由肝星状细胞(hepatic stellate cells,HSCs)的异常活化驱动。已有研究报道,γ-氨基丁酸(gamma-aminobutyric acid,GABA)受体可抑制HSC活化;而溶质载体家族32成员1(solute carrier family 32 member 1,SLC32A1)作为一种GABA转运蛋白,被推测参与LF调控,但其具体作用及潜在分子机制尚不明确。因此,本研究旨在探讨SLC32A1在HSC活化与LF进展中的作用,并阐明其下游调控机制。研究结果显示,LF患者中SLC32A1水平升高。体内实验表明,SLC32A1敲除可减轻小鼠CCl4诱导的LF。体外研究显示,SLC32A1在TGF-β1刺激的LX-2细胞(HSCs)中特异性上调,而在THLE-2、THP-1或肝窦内皮细胞(liver sinusoidal endothelial cells,LSECs)中未见此现象。SLC32A1过表达加重LX-2细胞活化和纤维化,而其敲低可逆转TGF-β1诱导效应。机制研究表明,SLC32A1促进LX-2细胞中GABA和甘氨酸(glycine)胞吐。然而,无论外源性还是内源性GABA/甘氨酸均不影响SLC32A1敲低所介导的活化减弱,提示需进一步探索其他通路。在55个差异表达基因中,PAI-1显示出最大差异。关键的是,PAI-1过表达逆转了SLC32A1敲低所诱导的活化和纤维化下降。综上,这些发现表明,缓解HSC活化和LF的关键机制并非GABA通路,而是SLC32A1介导的PAI-1通路下调,提示SLC32A1可能成为LF新的潜在治疗靶点。
该研究发表于《Journal of Endocrinology》,围绕肝纤维化(LF)的关键致病环节——肝星状细胞(HSCs)异常活化——展开,系统阐明了溶质载体家族32成员1(SLC32A1)在肝纤维化发生发展中的作用,并进一步解析了其下游分子通路。肝纤维化是多种慢性肝损伤通向肝硬化的重要病理阶段,其本质是细胞外基质(ECM)持续沉积、肝脏正常结构被破坏。当前临床治疗主要依赖病因控制、抗氧化和抗纤维化干预,但不同病因所致肝纤维化对现有策略反应并不一致,且部分治疗存在肝外不良反应或肝毒性风险。因此,从分子层面寻找新的调控靶点,尤其是直接参与HSC活化的关键因子,具有重要理论意义和潜在转化价值。既往研究提示γ-氨基丁酸(GABA)受体激动可抑制HSC活化,而SLC32A1作为囊泡型GABA转运相关蛋白,其在肝纤维化中的作用尚未明确,因此研究人员围绕“SLC32A1是否参与HSC活化及其是否通过GABA相关机制发挥作用”这一问题进行了深入研究。

在研究设计上,研究人员首先纳入医院来源的49例受试者,包括10例健康对照和39例肝纤维化患者,并结合肝组织及血清学指标评估SLC32A1与纤维化程度的相关性。随后构建SLC32A1基因敲除小鼠,采用CCl4诱导肝纤维化模型,结合肝组织病理学、透射电子显微镜(TEM)、Western blot(WB)、逆转录定量聚合酶链反应(RT-qPCR)和血清生化检测评价体内效应。体外部分以TGF-β1刺激LX-2细胞及原代HSCs建立活化模型,并在THLE-2、THP-1和LSECs中进行对照比较;通过质粒转染和siRNA敲低调控SLC32A1、PAI-1及GABA/甘氨酸合成相关基因表达,联合细胞活力、纤维化与炎症指标检测、RNA测序(RNA-seq)、双荧光素酶报告实验等解析下游机制。样本队列来源于临床患者和CCl4诱导小鼠模型。

研究首先证实了SLC32A1与肝纤维化存在明确相关性。在临床样本中,肝纤维化患者肝组织中α-SMA、Collagen I和vimentin等经典纤维化标志物显著高于健康对照,同时SLC32A1表达也明显升高。进一步相关性分析显示,SLC32A1与α-SMA、Collagen I、vimentin以及ALT、AST、TBIL等肝损伤和肝功能指标均呈正相关。这一结果提示,SLC32A1不仅与纤维沉积程度相关,也与肝脏功能损伤状态密切相连,为其作为病理调控因子的判断提供了临床证据。

在“Knockout of SLC32A1 suppressed CCl4-induced LF in mice”部分,研究人员通过CRISPR/Cas9构建SLC32A1敲除小鼠,并在CCl4诱导模型中观察其体内效应。结果表明,SLC32A1缺失显著改善肝脏大体形态异常,降低肝体比,减轻炎症浸润和胶原沉积。TEM显示,敲除组肝组织中成纤维样细胞减少、肝小叶结构保存较好。分子水平上,vimentin、α-SMA、Collagen I和IL-6表达降低,血清ALT、AST、TBIL亦明显改善。这些结果共同说明,SLC32A1在体内促进肝纤维化进展,而其缺失具有保护作用。

在“The expression of SLC32A1 was upregulated in non-HEPs in LF mice models induced by CCl4”部分,研究人员进一步追踪了SLC32A1的细胞来源。结果显示,在CCl4诱导的肝纤维化小鼠中,SLC32A1主要在非实质细胞(non-HEPs)中升高,而在肝实质细胞(HEPs)中表达不明显。体外比较THLE-2、LX-2、THP-1和LSECs后发现,TGF-β1刺激仅在LX-2细胞中诱导SLC32A1显著上调,提示其具有纤维化条件依赖性和细胞类型特异性。这一发现将后续机制研究聚焦于HSCs,说明SLC32A1很可能通过直接调控星状细胞活化参与纤维化过程。

在“SLC32A1 facilitated LX-2 cell activation”部分,研究人员通过过表达和敲低实验直接验证了SLC32A1对HSC活化的影响。SLC32A1过表达促进Col1a2、Timp3、Mmp9和Il-6表达上升,并抑制Il-10表达,同时提高α-SMA和Collagen I蛋白水平;相反,敲低SLC32A1可逆转TGF-β1诱导的上述改变。由于这些指标分别涉及细胞外基质代谢、炎症调控和肌成纤维样表型形成,因此该部分结果明确支持SLC32A1具有促进LX-2活化、炎症反应和纤维化表型形成的功能。

在“SLC32A1 regulated LX-2 cell activation through a GABA/glycine transport-independent mechanism”部分,论文重点检验了最初提出的GABA相关假说。结果显示,SLC32A1确实影响LX-2细胞内外GABA和甘氨酸分布:过表达促进二者向细胞外转运,而敲低则相反。然而,无论采用GABA转运抑制剂SKF89976A、甘氨酸转运抑制剂RG-1678与ALX-1393,还是补充外源性GABA或甘氨酸,均未显著改变LX-2细胞活力及α-Sma、Collagen I、Timp1等活化指标。进一步敲低GABA合成相关酶GAD1、GAD2以及甘氨酸代谢相关酶SHMT1后,同样未影响SLC32A1敲低后的抑制效应。由此可见,尽管SLC32A1具备调控GABA/甘氨酸外排的能力,但这一路径并不是其驱动HSC活化的核心机制。

在“Downstream target screening for SLC32A1 to promote the activation of HSCs”部分,研究人员采用RNA-seq对Wt-CCl4与KO-CCl4小鼠肝组织进行转录组分析,以寻找SLC32A1下游效应分子。GO富集显示差异基因主要与代谢过程相关,结合纤维化和HSC相关基因集交叉筛选后共获得55个候选基因。其中,Serpine1,即编码纤溶酶原激活物抑制剂-1(plasminogen activator inhibitor-1,PAI-1)的基因,表现出最大差异倍数。随后在临床样本、小鼠组织和细胞模型中均证实,PAI-1与SLC32A1呈一致变化趋势:肝纤维化中PAI-1升高,SLC32A1敲除后PAI-1下降,SLC32A1过表达则提高PAI-1的mRNA、蛋白及分泌水平。双荧光素酶实验进一步显示,SLC32A1可增强PAI-1启动子活性,提示其对PAI-1具有转录水平调控作用。

在“Downregulation of SLC32A1 mediated the PAI-1 pathway to alleviate LX-2 cell fibrosis”部分,研究人员通过功能回复实验验证PAI-1是否为关键下游介质。首先发现,PAI-1单独敲低可抑制TGF-β1诱导的LX-2细胞活力升高、纤维化标志物和炎症因子上调,而PAI-1过表达则增强这些效应。随后在SLC32A1敲低背景下补充过表达PAI-1,结果显示PAI-1可显著逆转SLC32A1敲低带来的保护作用,包括恢复细胞活力,重新升高Col1a2、Timp3、Mmp9、Il-6、α-SMA和Collagen I,并降低Il-10水平。相同趋势在原代HSCs中得到重复验证。这说明SLC32A1促进HSC活化、炎症和纤维化,关键依赖PAI-1这一效应分子,而并非依赖GABA通路。

讨论部分强调,肝纤维化治疗选择有限,HSC异常活化是其核心致病环节,因此寻找新的分子靶点具有重要意义。本研究首次报道SLC32A1参与肝纤维化调控,明确其在患者组织、动物模型和细胞模型中均表现为促纤维化分子。研究进一步指出,尽管SLC32A1是经典GABA转运相关蛋白,但在HSC中其致纤维化作用并不依赖GABA或甘氨酸转运/合成途径,而是通过上调PAI-1形成SLC32A1–PAI-1调控轴。该轴与既有纤维化网络相契合,因为PAI-1本身就是连接炎症信号与ECM积聚的重要介质。作者也指出,研究尚未系统解析SLC32A1上调的转录或表观遗传基础,也未对其他差异基因进行充分功能验证,因此机制网络仍待扩展。

研究结论部分可译为:本研究揭示,SLC32A1可通过调控PAI-1通路参与HSC活化及肝纤维化进程。此外,本研究表明,GABA并不是SLC32A1介导HSC活化的中介因素。该研究可为肝纤维化治疗提供新的思路和靶点,并为进一步研究肝脏疾病发病机制提供重要参考。总体而言,本文的核心贡献在于将SLC32A1从神经递质转运相关分子拓展为肝纤维化调控因子,提出了SLC32A1下调通过抑制PAI-1信号减轻HSC活化和肝纤维化的新机制,为肝纤维化的靶向干预提供了具有潜力的分子基础。
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