产毒素脆弱拟杆菌(Bacteroides fragilis toxin, BFT)促进小鼠胆囊癌(Gall Bladder Cancer, GBC)发生发展

《Nature Microbiology》:Bacteroides fragilis toxin promotes gall bladder cancer in mice

【字体: 大 中 小 】 时间:2026年06月26日 来源:Nature Microbiology 18.7

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  产肠毒素脆弱拟杆菌(Enterotoxigenic Bacteroides fragilis, ETBF)可分泌脆弱拟杆菌毒素(B. fragilis toxin, BFT),既往与结直肠癌相关,且在胆囊癌(Gall Bladder Cancer, GBC)患

  
产肠毒素脆弱拟杆菌(Enterotoxigenic Bacteroides fragilis, ETBF)可分泌脆弱拟杆菌毒素(B. fragilis toxin, BFT),既往与结直肠癌相关,且在胆囊癌(Gall Bladder Cancer, GBC)患者中有富集现象。研究人员通过分析患者样本证实ETBF在GBC肿瘤中富集,并可在小鼠胆囊内定植;体外实验及患者来源类器官(organoid)实验显示ETBF促进GBC细胞增殖;在小鼠GBC异种移植模型中,ETBF以BFT依赖的方式促进肿瘤生长。机制上,BFT的致瘤活性依赖于ETBF表面蛋白——膜结合裂解性胞壁质转糖基酶D(membrane-bound lytic murein transglycosylase D, MltD),其可与宿主受体——跨膜丝氨酸蛋白酶13(transmembrane serine protease 13, TMPRSS13)相互作用,激活Janus激酶2–信号转导与转录激活因子3(Janus kinase 2–signal transducer and activator of transcription 3, JAK2–STAT3)信号通路从而促进肿瘤发生;BFT还可激活核因子κB(nuclear factor kappa-B, NF-κB)信号,上调C-X-C基序趋化因子配体1(C-X-C motif chemokine ligand 1, CXCL1)分泌,导致髓源性抑制细胞(myeloid-derived suppressor cell, MDSC)招募及肿瘤微环境(tumour microenvironment, TME)中血管生成。上述发现揭示了ETBF通过宿主–病原体互作及微环境重塑促进GBC发展的双重机制,并为限制GBC进展提供了潜在治疗靶点。
论文解读:《Bacteroides fragilis toxin promotes gall bladder cancer in mice》(发表于Nature Microbiology)
一、研究背景与立项依据
胆囊癌(Gall Bladder Cancer, GBC)是胆道系统最具侵袭性的恶性肿瘤,预后极差,缺乏有效治疗手段,其分子机制尚未阐明。近年研究发现胆道微生物组是胆道疾病的重要环境因素,约15–20%的癌症与微生物病原体相关。脆弱拟杆菌(Bacteroides fragilis)是人肠道常见共生菌,其中产肠毒素亚型(Enterotoxigenic Bacteroides fragilis, ETBF)分泌脆弱拟杆菌毒素(B. fragilis toxin, BFT),已在结直肠癌中被证实具促瘤作用,且临床证据显示B. fragilis在GBC组织中富集,但ETBF是否及如何促进GBC发生发展尚不清楚。本研究旨在明确ETBF在GBC中的富集特征、促瘤功能及分子机制。
二、主要关键技术方法
研究人员收集25例GBC患者肿瘤及配对癌旁组织、慢性结石性胆囊炎(chronic calculous cholecystitis, CCC)及癌前病变组织进行宏基因组鸟枪测序(metagenomic shotgun sequencing)与荧光原位杂交(Fluorescence In Situ Hybridization, FISH);采用RT-qPCR、多重免疫荧光分析ETBF空间分布;建立C57BL/6小鼠经口灌胃ETBF定植模型评估胆囊屏障与胆汁酸代谢(液相色谱–串联质谱 LC–MS/MS);用NOZ及GBC-SD细胞系、人源GBC类器官(patient-derived organoid)与ETBF/非产毒脆弱拟杆菌(Non-enterotoxigenic Bacteroides fragilis, NTBF)及△bft、△mltD突变株共培养,检测增殖(CCK-8)、克隆形成、Transwell迁移侵袭及上皮–间质转化(Epithelial–Mesenchymal Transition, EMT)标志物;建立BALB/c裸鼠NOZ细胞皮下异种移植模型行瘤内注射细菌或重组BFT(recombinant BFT, rBFT);通过生物素pull-down联合质谱、GST pull-down、far western blot及Co-免疫沉淀(Co-immunoprecipitation, co-IP)鉴定ETBF表面黏附蛋白MltD与宿主受体TMPRSS13(transmembrane serine protease 13)互作;用CRISPR–Cas9敲除TMPRSS13验证功能;RNA测序(RNA sequencing, RNA-seq)分析差异基因与KEGG通路;细胞因子/趋化因子抗体芯片与ELISA检测CXCL1;流式细胞术分析肿瘤内髓源性抑制细胞(Myeloid-Derived Suppressor Cell, MDSC, CD45+CD11b+Gr-1+);免疫组化检测Ki-67与CD31评估增殖与血管生成;用NF-κB抑制剂JSH-23及抗Gr-1抗体、贝伐珠单抗(bevacizumab)进行体内干预。
三、研究结果
B. fragilis is enriched in gall bladder tumour tissue compared with para-tumour tissue
对25例GBC患者肿瘤(T)与配对癌旁(PT)组织宏基因组测序发现B. fragilis在肿瘤中显著富集,GBC组高于CCC组;RT-qPCR与ETBF特异性探针FISH证实ETBF在肿瘤及癌前病变中定植率升高,且主要定位于胆囊黏膜靠近肿瘤细胞区,提示ETBF可能在GBC早期参与发病。
ETBF impairs gall bladder barrier function and bile acid homeostasis in mice
C57BL/6小鼠经口灌胃ETBF 6周后可于胆囊黏膜定植并检出bft基因;Western blot显示紧密连接蛋白E-cadherin、Claudin-3、Occludin、ZO-1下调,提示ETBF破坏胆囊上皮屏障;LC–MS/MS显示胆汁酸谱重塑,初级胆汁酸合成通路激活。
ETBF promotes GBC growth both in vitro and in vivo
ETBF而非NTBF显著促进NOZ、GBC-SD细胞增殖及患者来源类器官扩增,增强克隆形成、迁移与侵袭能力,下调上皮标记物、上调间质标记物(Vimentin、N-cadherin);裸鼠皮下移植瘤瘤内注射ETBF加速肿瘤生长、增加重量并提高Ki-67+指数。
BFT is required for the tumour-promoting effects of ETBF
构建ETBF △bft缺失株,其丧失促GBC细胞增殖、类器官生长促进、克隆形成、迁移侵袭及体内成瘤能力,证明BFT是ETBF促瘤的关键毒力因子。
BFT alone is insufficient to directly promote GBC cell proliferation
ETBF条件培养基(ETBF-CM)及重组rBFT不能单独促进GBC细胞增殖,虽具E-cadherin切割活性,提示BFT需完整细菌或微环境协同发挥促瘤作用。
ETBF preferentially interacts with GBC cell lines via surface protein MltD
ETBF对GBC细胞黏附强于正常胆囊上皮细胞(L-2F7),不侵入胞内;biotin pull-down与质谱鉴定ETBF表面膜蛋白MltD为候选黏附素;构建ETBF △mltD及回补株,△mltD黏附能力与体内促瘤能力显著减弱,回补后恢复,表明MltD介导ETBF对GBC细胞的特异性黏附与促瘤。
ETBF surface protein MltD binds to TMPRSS13 on GBC cells
GST pull-down与co-IP鉴定宿主跨膜受体TMPRSS13与MltD直接互作;TMPRSS13在GBC细胞中高表达,CRISPR–Cas9敲除TMPRSS13削弱ETBF黏附与体内促瘤,回补TMPRSS13恢复表型,证实MltD–TMPRSS13轴为ETBF定植与促瘤所必需。
BFT enhanced MltD–TMPRSS13-dependent adhesion by upregulating TMPRSS13
BFT通过激活NF-κB p65入核结合TMPRSS13启动子p65结合位点,上调TMPRSS13蛋白表达从而增强MltD–TMPRSS13介导的黏附;NF-κB抑制剂JSH-23可逆转此效应。
ETBF activates the JAK2–STAT3 signalling pathway via the BFT–MltD–TMPRSS13 axis
RNA-seq显示ETBF处理上调JAK–STAT通路基因;Western blot证实ETBF诱导JAK2(Tyr1007)与STAT3(Tyr705)磷酸化,该激活依赖BFT、MltD及宿主TMPRSS13(△bft/△mltD/TMPRSS13敲除均取消激活),而rBFT单独不激活JAK2–STAT3,说明完整细菌通过MltD–TMPRSS13–JAK2–STAT3轴促进癌细胞增殖。
ETBF promotes CXCL1 secretion to recruit MDSCs via the BFT–NF-κB–CXCL1 axis
细胞因子芯片筛选发现ETBF显著上调NOZ细胞CXCL1分泌,依赖BFT(△bft无此作用),rBFT可诱导CXCL1,被JSH-23阻断;体内ETBF处理增加移植瘤内MDSC(CD45+CD11b+Gr-1+)比例与CD31+微血管密度;rBFT单独瘤内注射也增加MDSC招募与血管生成、促进肿瘤生长;MDSC条件培养基促进人脐静脉内皮细胞(Human Umbilical Vein Endothelial Cell, HUVEC)成管,可被抗VEGF抗体(bevacizumab)抑制;体内清除MDSC或贝伐珠单抗可逆转BFT促瘤效应,证明BFT通过NF-κB–CXCL1招募MDSC并诱导VEGF依赖性血管生成重塑TME。
四、讨论与结论总结(翻译并浓缩)
研究证实ETBF是GBC重要的瘤内致病微生物,通过双重机制促瘤:(1)ETBF表面MltD与GBC细胞TMPRSS13结合,BFT上调TMPRSS13表达以增强黏附,该互作激活JAK2–STAT3信号促进癌细胞增殖;(2)ETBF分泌BFT激活NF-κB–CXCL1轴,招募MDSC并促进VEGF依赖的血管生成,间接塑造免疫抑制与促血管生成TME。ETBF定植伴随胆汁酸代谢紊乱可能进一步放大炎症与基因组不稳定性。TMPRSS13首次被鉴定为细菌黏附受体。临床层面,检测ETBF定植或阻断MltD–TMPRSS13互作、联合抗血管生成或MDSC清除策略具潜在诊疗价值。局限包括缺乏完全模拟人免疫微环境的原位自发GBC模型及BFT专属宿主受体未完全阐明。综上,ETBF通过BFT–MltD–TMPRSS13–JAK2–STAT3细胞自主途径及BFT–NF-κB–CXCL1–MDSC–血管生成非细胞自主途径协同促进GBC进展,为微生物靶向干预GBC提供理论与实验依据。
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