大约三分之一的人类蛋白质组依赖金属离子作为重要辅助因子,这些离子在调控蛋白质结构及变构调控过程中起着关键作用。[1], [2], [3], [4], [5] 金属蛋白为了满足金属离子结合的精确几何与化学要求,演化出了复杂的配位网络。[6], [7], [8] 因此,若用其他离子竞争性取代天然金属辅助因子,可能会破坏这一精密调控网络,进而改变蛋白质的构象与内在活性。RAS家族蛋白中存在的金属离子依赖性差异就体现了这种功能差异。[9], [10], [11], [12] 所以,精准描述金属离子引发的构象变化对于理解蛋白质调控机制至关重要。
传统上,金属蛋白复合物的结构研究主要依靠X射线晶体学和核磁共振技术。尽管这些方法能提供高分辨率的静态结构图像,但在捕捉高度动态的多种构象及短暂的变构反应方面存在局限。[13], [14], [15], [16], [17] 为弥补这一缺陷,原生质谱技术结合193纳米紫外光解技术便成为一种有效的分析工具。该技术可通过高效的主链断裂,实现对构象变化的定量分析,超越传统静态结构模型的限制。[18], [19], [20], [21], [22], [23]
Kirsten大鼠肉瘤蛋白(KRAS)是调控正常细胞生长和致癌转化的重要信号通路中的关键分子开关,由于其难以被药物修饰,因此成为研究金属离子依赖性功能动态的理想模型。[24], [25] KRAS依赖内源性的Mg2+来维持其与核苷酸结合的稳定构象。[26], [27], [28] 不过,由于Zn2+的离子半径与Mg2+相近,二者可能存在竞争性相互作用。虽然已有同源蛋白Rac1与Zn2+相互作用的静态结构研究,但Zn2+对KRAS构象的影响尚未明确。[10] 本研究利用原生质谱技术和193纳米紫外光解技术分析KRAS-Mg2+/Zn2+复合物,揭示不同金属辅助因子对KRAS构象动态的影响,阐明其竞争性配位的结构原理。