SHP2通过促进转化生长因子-β类型I受体(TβRI)的不稳定化负向调控转化生长因子-β(TGF-β)信号通路

《Cell Communication and Signaling》:SHP2 negatively regulates TGF-β signaling by destabilizing the TGF-β type I receptor

【字体: 时间:2026年07月05日 来源:Cell Communication and Signaling 11.6

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  含SRC同源结构域2(SH2)的蛋白酪氨酸磷酸酶2(SHP2),作为众多信号通路的中心节点,在包括癌症在内的多种疾病中发挥着重要作用。转化生长因子β(TGF-β)在胚胎发育和肿瘤发生过程中影响广泛的生物学过程,包括细胞增殖、凋亡、分化和迁移。TGF-β以细胞背

  
含SRC同源结构域2(SH2)的蛋白酪氨酸磷酸酶2(SHP2),作为众多信号通路的中心节点,在包括癌症在内的多种疾病中发挥着重要作用。转化生长因子β(TGF-β)在胚胎发育和肿瘤发生过程中影响广泛的生物学过程,包括细胞增殖、凋亡、分化和迁移。TGF-β以细胞背景依赖性的方式调控细胞增殖;TGF-β介导的生长抑制功能丧失是癌细胞的主要特征之一。SHP2在癌细胞和成纤维细胞中调控经典和非经典TGF-β信号通路,然而,TGF-β激活SHP2的机制以及SHP2在TGF-β介导的生长抑制中的作用尚不清楚。本研究评估了TGF-β刺激正常细胞和乳腺癌细胞后SHP2的磷酸化和激活情况。通过共免疫沉淀(co-IP)实验确定了SHP2与SRC之间的相互作用。研究人员采用药理学抑制和gRNA介导的基因敲除来评估SHP2在TGF-β信号通路中的作用,并利用RNA测序鉴定经TGF-β处理的SHP2敲除细胞中的基因表达模式。利用乳腺癌细胞进行功能研究,以验证SHP2在TGF-β介导的生长抑制中的作用。研究结果表明,TGF-β通过促进SRC对SHP2的酪氨酸磷酸化来激活SHP2。在乳腺癌细胞中,SHP2缺失通过阻碍TβRI与其负调控因子SMAD7之间的相互作用,减少了TβRI的泛素化和降解。SHP2的药理学或遗传性抑制促进了TGF-β诱导的SMAD2磷酸化和转录应答。因此,抑制SHP2显著增强了TGF-β诱导的细胞生长停滞和衰老,包括促进TGF-β诱导的细胞周期抑制因子p15在基因和蛋白水平上的表达。这些发现揭示了一种TGF-β以SRC依赖性方式激活SHP2的机制,SHP2作为负反馈机制调控TGF-β信号通路。
研究背景与问题提出

转化生长因子β(TGF-β)是一种多功能细胞因子,在胚胎发育和肿瘤发生过程中调控细胞增殖、凋亡、分化和迁移等广泛的生物学过程。TGF-β对细胞增殖的调控具有显著的细胞背景依赖性,其介导的生长抑制功能丧失是癌细胞的关键特征之一。TGF-β通过与I型和II型双特异性激酶受体——TβRI和TβRII结合来发挥其细胞效应。配体结合后,组成性激活的TβRII磷酸化TβRI近膜区的GS结构域;活化的TβRI随后通过SMAD依赖性和SMAD非依赖性机制激活下游靶点。在非经典通路中,TGF-β可激活ERK1/2、JNK和p38 MAPK、PI3K-AKT、酪氨酸激酶SRC以及NF-κB等信号分子。

SHP2是由蛋白酪氨酸磷酸酶非受体11型(PTPN11)基因编码的胞质蛋白,广泛表达于多种细胞类型。SHP2含有两个SH2结构域、一个蛋白酪氨酸磷酸酶结构域以及富含脯氨酸的C末端尾部,其中包含两个关键磷酸化位点Tyr542和Tyr580。既往研究表明,SHP2在TGF-β信号调控中发挥复杂作用:在肺癌细胞中,SHP2敲低部分抑制TGF-β诱导的SMAD2/3磷酸化和上皮-间充质转化(EMT);而在膀胱癌和肺癌细胞系中,SHP2通过去磷酸化泛素连接酶SMURF2的Tyr314和Tyr434来抑制TGF-β信号。此外,TGF-β还能增强成纤维细胞中SHP2的磷酸酶活性,导致JAK2抑制性磷酸化位点Tyr570的去磷酸化,从而增强JAK2/STAT3信号。然而,TGF-β激活SHP2的具体机制以及SHP2在TGF-β介导的生长抑制中的作用尚不清楚。基于此,研究人员开展了本项研究,旨在阐明TGF-β调控SHP2的分子机制及其在乳腺癌中的功能意义,相关成果发表在《Cell Communication and Signaling》。

本研究主要采用了以下关键技术方法:在正常细胞和乳腺癌细胞系(包括小鼠乳腺上皮细胞NMuMG、小鼠乳腺癌细胞4T1和人类乳腺癌细胞MCF7)中进行细胞培养和处理;利用共免疫沉淀(co-IP)实验检测蛋白相互作用;通过药理学抑制(SHP2抑制剂SHP099、SHP1/2抑制剂NSC-87877、SRC抑制剂SU6656、TβRI激酶抑制剂SB505124)和gRNA介导的基因敲除技术(CRISPR-Cas12a系统敲除TβRI,慢病毒介导的gRNA敲除SHP2)进行功能获得和功能丧失研究;运用体外激酶实验和磷酸酶活性测定评估酶活性;采用RNA测序(RNA-Seq)结合基因本体(GO)分析鉴定基因表达模式;通过MTT比色法进行细胞增殖检测;利用定量RT-PCR检测基因表达;使用环己酰亚胺(CHX)追踪实验评估蛋白质半衰期;并通过共免疫沉淀检测泛素化水平和蛋白相互作用。

研究结果

TGF-β刺激诱导SHP2磷酸化

研究人员首先检测了TGF-β刺激后SHP2的磷酸化和激活情况。在NMuMG、4T1和MCF7三种细胞系中,TGF-β处理120分钟后均能诱导SHP2在Tyr542位点的磷酸化。为验证这一过程的受体依赖性,研究人员利用CRISPR-Cas12a技术构建了TβRI敲除的4T1细胞,发现TGF-β无法在这些细胞中诱导SHP2磷酸化,表明该过程需要TβRI的参与。值得注意的是,使用TβRI激酶抑制剂SB505124并不能阻止TGF-β诱导的SHP2 Tyr542磷酸化,提示该磷酸化事件不依赖于TβRI的激酶活性。通过体外磷酸酶活性测定,研究人员进一步证实TGF-β处理能够增强SHP2的酶活性。

TGF-β刺激增强SRC与SHP2的结合

鉴于TGF-β能够激活SRC激酶,而SHP2又已知与SRC存在协作关系,研究人员推测SRC可能参与介导TGF-β对SHP2的激活。通过STRING数据库分析和实验验证,研究人员证实SHP2与SRC存在相互作用。过表达野生型SRC能够诱导SHP2的酪氨酸磷酸化,而激酶失活突变体SRC(K295R, Y527F)则无此效应。体外激酶实验直接证明SRC能够磷酸化SHP2的Tyr542位点。功能上,SRC过表达显著增强SHP2的磷酸酶活性。在MCF7细胞中,TGF-β刺激增强了SHP2与SRC的相互作用,而SRC抑制剂SU6656则能够阻断TGF-β诱导的SHP2磷酸化。这些结果表明,TGF-β通过促进SRC与SHP2的结合,进而由SRC磷酸化并激活SHP2。

SHP2与TβRI相互作用并调控其酪氨酸磷酸化

作为蛋白酪氨酸磷酸酶,SHP2可能通过去磷酸化TβRI来调控信号转导。体外实验表明,纯化的SHP2能够显著降低SRC诱导的TβRI酪氨酸磷酸化水平。在细胞水平,过表达野生型SHP2能够显著降低TGF-β诱导的TβRI酪氨酸磷酸化,而酶活性缺陷突变体SHP2(C495S)则无此效应。TGF-β刺激增强了野生型SHP2与TβRI的相互作用,但该增强效应在SHP2(C495S)突变体中消失,提示SHP2的酶活性促进了其与TβRI的TGF-β诱导性相互作用。SHP2特异性抑制剂SHP099也能 abolish(消除)TGF-β诱导的SHP2-TβRI相互作用,并伴随TβRI酪氨酸磷酸化水平的升高。这些发现证实SHP2与TβRI相互作用,并负向调控其酪氨酸磷酸化。

SHP2抑制TGF-β信号通路

为探究SHP2在TGF-β信号中的功能角色,研究人员利用SMAD响应性CAGA-荧光素酶报告基因检测系统进行了评估。结果显示,无论是使用NSC-87877还是SHP099抑制SHP2,均能显著增强TGF-β诱导的CAGA-荧光素酶活性。在SHP2敲除的MCF7细胞中,TGF-β诱导的CAGA-荧光素酶报告基因活性和SMAD2磷酸化水平均显著增强。相反,过表达野生型SHP2能够减弱TGF-β诱导的CAGA-荧光素酶活性,而酶活性失活突变体SHP2(C459S)则无此抑制作用。这些结果共同强调了SHP2在调控TGF-β信号中的负反馈作用。

抑制SHP2增强TGF-β的生长抑制效应

研究人员进一步通过RNA-Seq分析探索了SHP2在TGF-β诱导的生理反应中的作用。在野生型MCF7细胞中,TGF-β处理主要富集与"上皮细胞迁移"相关的基因本体生物学过程;而在SHP2敲除细胞中,TGF-β处理则转向富集"上皮细胞增殖调控"等过程,提示SHP2敲除影响了TGF-β对细胞增殖的调控效应。功能实验证实 indeed,SHP2的药理学抑制(SHP099)能够增强TGF-β对NMuMG、4T1和MCF7细胞的生长抑制作用,而SHP2的基因敲除也产生类似效果。重要的是,在TβRI敲除的4T1细胞中,SHP099处理虽能降低基础细胞生长,但无法增强TGF-β的效应,表明SHP2抑制对TGF-β诱导生长抑制的增强作用依赖于TβRI。

抑制SHP2增强TGF-β诱导的细胞衰老

为深入阐明SHP2影响TGF-β诱导生长抑制的机制,研究人员通过RNA-Seq比较了野生型和SHP2敲除MCF7细胞中TGF-β诱导的差异表达基因。结果显示,SERPINE1在TGF-β刺激的SHP2敲除细胞中显著上调,而在野生型细胞中则无明显变化。SERPINE1是衰老细胞的标志物,其产物与衰老相关分泌表型(SASP)因子的分泌相关。SA-β-半乳糖苷酶染色实验证实,野生型MCF7细胞中TGF-β单独处理不能显著诱导衰老,但SHP2敲除本身即可诱导细胞衰老,并显著增强细胞对TGF-β诱导衰老的敏感性。

CDKN2B是细胞衰老的成熟转录标志物,其编码产物p15能够促进TGF-β诱导的生长停滞。研究人员发现,SHP2抑制剂SHP099处理或SHP2基因敲除均能显著增强TGF-β诱导的CDKN2B mRNA上调,并进一步增强TGF-β诱导的p15蛋白水平升高。这些观察结果表明,SHP2抑制通过增强TGF-β诱导的CDKN2B/p15上调,正向调控了TGF-β介导的生长停滞和细胞衰老。

抑制SRC促进TGF-β诱导的衰老和生长抑制

基于SRC磷酸化并激活SHP2的发现,研究人员进一步探索了SRC在TGF-β信号中的作用。在MCF7细胞中,SRC抑制剂SU6656处理显著增强了TGF-β诱导的CDKN2B转录和p15蛋白表达,并促进TGF-β诱导的细胞衰老和生长抑制。这些结果提示,SRC抑制通过阻止SHP2的激活,使细胞对TGF-β诱导的衰老和生长抑制更加敏感。

SHP2抑制增加TβRI的稳定性

为阐明SHP2调控TGF-β信号的分子机制,研究人员检测了SHP2敲除后TGF-β信号关键组分的蛋白水平。结果显示,SHP2敲除特异性地增加了TβRI的蛋白水平,但TGFBRI mRNA水平无显著变化,提示SHP2影响TβRI的蛋白稳定性。环己酰亚胺(CHX)追逐实验证实,SHP2敲除显著延长了TβRI的蛋白半衰期,同时降低了TβRI的整体泛素化水平。

SMAD7是TGF-β信号的经典负调控因子,通过招募E3泛素连接酶SMURF2促进TβRI的泛素化和蛋白酶体降解。研究人员推测SHP2可能通过影响SMAD7-TβRI相互作用来调控受体稳定性。共免疫沉淀实验证实,SHP2敲除显著降低了TβRI与SMAD7的相互作用。相反,过表达SHP2则增强了TβRI与SMAD7的相互作用,以及TβRI与SMURF2的相互作用。这些结果表明,SHP2通过促进SMAD7与TβRI的结合,进而招募SMURF2介导TβRI的泛素化降解,从而负向调控TGF-β信号。

基于上述发现,研究人员提出了一个工作模型:TGF-β激活SRC,SRC继而磷酸化并激活SHP2;活化的SHP2与TβRI相互作用,通过促进受体降解来减弱TGF-β信号,从而形成负反馈调控环路。

讨论与结论总结

本研究揭示了TGF-β信号通路中一个此前未被充分认识的SRC-SHP2-TβRI负反馈调控轴。研究人员证实,TGF-β以不依赖于TβRI激酶活性的方式,通过SRC依赖性的SHP2 Tyr542磷酸化来激活SHP2。这一发现拓展了对TGF-β信号精细调控机制的理解,将SRC的非经典信号功能与SHP2的磷酸酶活性进行了功能连接。

在分子机制层面,研究阐明了SHP2通过促进TβRI与SMAD7的相互作用,进而增强SMURF2介导的TβRI泛素化降解,从而负向调控TGF-β信号。这一机制将SHP2的功能与SMAD7-SMURF2这一经典的TGF-β负调控模块相联系,为理解TGF-β信号的时空调控提供了新视角。值得注意的是,SRC在TGF-β信号中具有双重角色:一方面,SRC直接磷酸化TβRI促进非经典信号如细胞迁移;另一方面,SRC通过激活SHP2限制经典SMAD信号的强度和持续时间。

在功能层面,研究证实了SHP2抑制能够显著增强TGF-β对乳腺癌细胞的生长抑制和促衰老效应,这为乳腺癌治疗提供了潜在的策略依据。特别是,SHP2特异性抑制剂SHP099能够增强细胞对TGF-β生长抑制信号的敏感性,而TGF-β在肿瘤早期具有抑癌作用,这一发现具有重要的转化医学意义。然而,研究人员也认识到TGF-β在肿瘤进展后期的促癌作用,因此SHP2抑制剂在临床中的应用需要谨慎评估肿瘤阶段和细胞背景。

研究结论部分指出,这些观察结果为TGF-β信号的反馈控制机制提供了新见解,即通过SRC介导的SHP2磷酸化导致TβRI不稳定化。研究人员进一步证实,SHP2抑制通过阻碍SMAD7与TβRI的相互作用、减少TβRI降解,从而正向调控TGF-β信号,增强细胞生长停滞和衰老相关基因(如SERPINE1和CDKN2B)的诱导表达。本研究的局限性在于所提出的SRC-SHP2-TβRI调控轴主要在体外培养的细胞和乳腺上皮细胞模型中进行表征,未来在适当的体内肿瘤模型中验证该通路的重要性将具有重要意义。
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