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在纳米孔直接RNA测序与PCR-cDNA测序中,不同的5′和3′端覆盖偏好会影响转录组解读的结果
《BMC Genomics》:Distinct 5′ and 3′ coverage biases shape transcriptome interpretation in Nanopore direct RNA versus PCR-cDNA sequencing
【字体: 大 中 小 】 时间:2026年07月16日 来源:BMC Genomics 3.9
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摘要长读长RNA测序技术能够实现转录本的分型分析,但文库制备过程会引入系统性偏差,从而影响生物学结果的解读。我们以经白细胞介素-6刺激的SKMM2骨髓瘤细胞以及ERCC合成突变体为研究对象,对比了牛津纳米孔公司的两种测序方案——PCR-cDNA法和直接RNA法。直接RNA法生成的
长读长RNA测序技术能够实现转录本的分型分析,但文库制备过程会引入系统性偏差,从而影响生物学结果的解读。我们以经白细胞介素-6刺激的SKMM2骨髓瘤细胞以及ERCC合成突变体为研究对象,对比了牛津纳米孔公司的两种测序方案——PCR-cDNA法和直接RNA法。直接RNA法生成的读长更长、质量更高,且能产生更多高可信度的转录本类型,但5′端的覆盖度明显较低。PCR-cDNA法则产生的片段较短,3′端序列表达不足,虽能检测到更多低丰度转录本,但其可信度较低。不同测序方案带来的偏差带来了显著影响:差异表达分析显示,对IL-6有响应的基因之间存在较少的重叠,而直接RNA法在通路富集分析方面的结果更为广泛。在转录本分型层面,不同转录本的表达差异几乎完全由所采用的测序方案决定,通过具体案例(如RPL22L1、GRB2、RNF220)可看出其一致性及差异性。ERCC对照实验进一步证实,这些偏差属于技术层面问题而非生物学因素所致。总体而言,我们的研究结果表明,尽管这两种方法都能实现准确的基因水平定量分析,但在转录本层面的结论则高度依赖于所选的测序方案,这凸显了在长读长转录组学研究中需谨慎选择测序方法的必要性。
长读长RNA测序技术能够实现转录本的分型分析,但文库制备过程会引入系统性偏差,从而影响生物学结果的解读。我们以经白细胞介素-6刺激的SKMM2骨髓瘤细胞以及ERCC合成突变体为研究对象,对比了牛津纳米孔公司的两种测序方案——PCR-cDNA法和直接RNA法。直接RNA法生成的读长更长、质量更高,且能产生更多高可信度的转录本类型,但5′端的覆盖度明显较低。PCR-cDNA法则产生的片段较短,3′端序列表达不足,虽能检测到更多低丰度转录本,但其可信度较低。不同测序方案带来的偏差带来了显著影响:差异表达分析显示,对IL-6有响应的基因之间存在较少的重叠,而直接RNA法在通路富集分析方面的结果更为广泛。在转录本分型层面,不同转录本的表达差异几乎完全由所采用的测序方案决定,通过具体案例(如RPL22L1、GRB2、RNF220)可看出其一致性及差异性。ERCC对照实验进一步证实,这些偏差属于技术层面问题而非生物学因素所致。总体而言,我们的研究结果表明,尽管这两种方法都能实现准确的基因水平定量分析,但在转录本层面的结论则高度依赖于所选的测序方案,这凸显了在长读长转录组学研究中需谨慎选择测序方法的必要性。
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