过氧化物酶体增殖物激活受体δ通过脂滴相关代谢重塑和p38 MAPK信号调控肌原性分化

《Animal Science Journal》:Peroxisome Proliferator–Activated Receptor Delta Regulates Myogenic Differentiation via Lipid Droplet–Associated Metabolic Remodeling and p38 MAPK Signaling

【字体: 时间:2026年07月18日 来源:Animal Science Journal 1.6

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  骨骼肌发育和代谢调节对家畜生产力和肉质至关重要。本研究调查了过氧化物酶体增殖物激活受体δ(PPARδ)在肌原性分化和脂滴(LD)形成中的作用,特别关注p38丝裂原活化蛋白激酶(MAPK)信号。C2C12成肌细胞被诱导分化,并用PPARδ激动剂GW501516或

  
骨骼肌发育和代谢调节对家畜生产力和肉质至关重要。本研究调查了过氧化物酶体增殖物激活受体δ(PPARδ)在肌原性分化和脂滴(LD)形成中的作用,特别关注p38丝裂原活化蛋白激酶(MAPK)信号。C2C12成肌细胞被诱导分化,并用PPARδ激动剂GW501516或拮抗剂GSK3787处理。然后通过肌球蛋白重链免疫染色以及融合指数和肌管面积的计算评估肌原性分化。通过BODIPY染色和Plin2表达分析评估LD形成。通过Western blotting分析p38 MAPK的活化,并使用抑制剂SB203580检查其作用。PPARδ的活化显著增强了肌原性分化,而其抑制则抑制了这一过程。PPARδ活化也促进了早期分化期间的LD形成并上调了Plin2表达。此外,GW501516增加了p38 MAPK磷酸化。抑制p38 MAPK显著减弱了PPARδ活化诱导的LD形成和肌原性分化。这些发现表明,PPARδ通过协调的脂质代谢重塑和p38 MAPK信号促进肌原性分化,突出了代谢调节与肌肉分化之间的关联。该通路可能代表改善家畜肌肉发育和肉质的一个潜在靶点。
**研究背景与问题**
骨骼肌发育和代谢调节是决定家畜产肉效率和肉质的关键因素。肌原性分化(myogenic differentiation)受到严格调控,涉及成肌细胞退出细胞周期、排列融合形成多核肌管。虽然转录因子如MyoD和肌细胞生成素(myogenin)已被确认为核心调控因子,但最近证据表明代谢调节也在此过程中发挥重要作用。脂质代谢,尤其是脂滴(lipid droplet, LD)动态,已作为细胞分化的重要调节因子出现,但脂质重塑对肌原性分化的贡献仍不完全清楚。过氧化物酶体增殖物激活受体δ(peroxisome proliferator–activated receptor delta, PPARδ)在骨骼肌中高表达,调节脂质利用和能量稳态,但其在肌原性分化中与LD相关的代谢重塑及下游信号的作用尚不明确。阐明该机制对于理解骨骼肌发育中脂质代谢与分化信号的整合具有重要意义,并为改善家畜肌肉发育和肉质提供潜在靶点。为此,研究人员利用C2C12成肌细胞模型,探讨PPARδ在肌原性分化中的作用,并重点关注LD形成和p38丝裂原活化蛋白激酶(mitogen-activated protein kinase, MAPK)信号通路。该论文发表在《Animal Science Journal》。

**关键技术方法**
研究人员使用小鼠C2C12成肌细胞系(来源:DS Pharma Biomedical, Japan),通过添加PPARδ选择性激动剂GW501516(0.1 μM)或拮抗剂GSK3787(1 μM)处理诱导分化,并利用p38 MAPK抑制剂SB203580(10 μM)进行功能验证。主要技术包括:免疫细胞化学(使用抗肌球蛋白重链MF20抗体)结合图像分析计算融合指数(fusion index)和肌管面积;BODIPY 493/503荧光染色定量LD数量;Western blotting检测p38 MAPK及磷酸化p38(p-p38)蛋白水平;实时定量PCR(qRT-PCR)检测Plin2、肌球蛋白重链亚型(Myh1、Myh4、Myh7)、融合相关因子(Myomaker、Myomixer)的mRNA表达。所有实验均重复至少三次,数据以均值±标准误表示,统计采用t检验或单因素方差分析(ANOVA)结合Tukey事后检验。

**研究结果**
3.1 PPARδ激动剂促进C2C12细胞肌原性分化,而拮抗剂抑制分化
研究人员通过免疫染色发现,经GW501516处理的细胞中肌球蛋白重链(MHC)阳性肌管显著增多,融合指数(p < 0.001)和肌管面积(p < 0.01)均显著高于对照组。相反,GSK3787处理显著抑制肌管形成,融合指数(p < 0.001)和肌管面积(p < 0.05)均降低。这表明PPARδ激活促进肌原性分化,抑制则损害该过程。

3.2 PPARδ调节早期分化C2C12细胞中的LD形成
qRT-PCR显示,GW501516处理在12至48小时显著上调Plin2 mRNA表达,48小时达峰值(p < 0.01)。BODIPY染色证实48小时LD积累显著增加,每个细胞的LD数量增加(p < 0.001)。相反,GSK3787处理在48小时显著降低Plin2表达(p < 0.01)和LD数量(p < 0.001)。由于48小时处于早期分化阶段(尚未形成大量多核肌管),LD积累反映的是早期成肌细胞的脂质重塑,而非成熟肌管中的脂质沉积。

3.3 PPARδ激动剂(GW501516)激活C2C12细胞中p38 MAPK磷酸化
Western blotting结果显示,GW501516处理48小时后,磷酸化p38(p-p38)水平显著高于对照组,表明PPARδ激活促进了p38 MAPK信号。

3.4 抑制p38 MAPK减弱PPARδ激动剂诱导的LD形成和肌原性分化
在分化前48小时加入SB203580,单独处理显著降低基础LD形成(LD数量减少,p < 0.05),且与GW501516联合处理时,GW501516诱导的LD增加被显著抑制(p < 0.05)。进一步,将细胞在分化前48小时短暂暴露于GW501516,随后换用无药培养基至第5天,结果发现GW501516短暂处理足以显著提高融合指数和肌管面积(p < 0.05),而SB203580单独处理则抑制基础分化(p < 0.05),联合处理时GW501516诱导的分化增强被显著减弱(p < 0.05)。这些结果表明p38 MAPK信号对于基础及PPARδ诱导的LD形成和肌原性分化均不可或缺。

**讨论与结论**
讨论部分指出,PPARδ激活通过多种互补机制促进肌原性分化,包括代谢重塑、融合相关因子的短暂调节及p38 MAPK信号。研究人员排除了细胞增殖的完全解释(GW501516促进增殖,但融合指数反映的是融合效率而非绝对细胞数),也排除了典型慢肌纤维表型的转变(Myh7表达反而降低)。此外,融合因子Myomaker在12小时短暂上调,但Myomixer无显著变化,提示融合调控并非主要机制。p38 MAPK作为应激响应激酶,其激活可能既直接参与肌原性信号,又作为对脂质代谢变化的适应性反应。抑制p38 MAPK同时减弱LD形成和分化,表明二者可能通过该共同通路协调调控,但并非直接因果关系。

研究结论翻译如下:综上所述,研究人员的发现支持一个模型,其中PPARδ激活促进p38 MAPK信号和肌原性分化,同时增加分化过程中的脂滴积累。在这个模型中,脂滴积累和增强的肌原性分化被呈现为与PPARδ激活相关的平行事件,而非直接的因果关系。这些发现表明,PPARδ介导的代谢重塑和p38 MAPK信号与肌原性分化的调节密切相关。从应用角度看,该通路可能为改善家畜肌肉发育和肉质提供潜在靶点,尤其是通过膳食脂质或生物活性化合物调节PPAR信号。
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