《Animals》:Rethinking Negative Reinforcement in Zoo Animal Welfare: A Constructional Approach to Distance as a Reinforcer to Address Fear and Aggression
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本研究评估了饲料中添加CpG寡脱氧核苷酸(CpG ODNs)对凡纳滨对虾(*Litopenaeus vannamei*)生长性能、免疫、消化功能、肠道微生物群及转录组反应的影响。初始体重为0.30 ± 0.02 g的虾被投喂添加0、0.1、0.4、1.6、6.
本研究评估了饲料中添加CpG寡脱氧核苷酸(CpG ODNs)对凡纳滨对虾(*Litopenaeus vannamei*)生长性能、免疫、消化功能、肠道微生物群及转录组反应的影响。初始体重为0.30 ± 0.02 g的虾被投喂添加0、0.1、0.4、1.6、6.4或25.6 mg kg-1 CpG ODNs的饲料,为期8周。饲料CpG ODNs未显著改善大多数生长参数;然而,投喂添加1.6 mg kg-1 CpG ODNs饲料的虾表现出较低的饲料转化率。在白斑综合征病毒(WSSV)攻毒后,投喂添加25.6 mg kg-1 CpG ODNs饲料的虾存活率高于对照组,而副溶血弧菌(*Vibrio parahaemolyticus*)攻毒后各组间存活率无显著差异。饲料中添加0.4 mg kg-1以上水平的CpG ODNs提高了几种血清免疫相关酶和抗氧化酶的活性,降低了丙二醛(MDA)含量,并增强了肠道胰蛋白酶和淀粉酶活性。此外,该处理增加了微生物丰富度指数,同时降低了弧菌(*Vibrio*)和发光杆菌(*Photobacterium*)的相对丰度。转录组分析显示,与对照组相比,CpG ODNs(0.4 mg kg-1以上)组中多个通路显著富集,包括AMPK信号通路和JAK–STAT信号通路。总之,饲料中添加CpG ODNs未显著改善凡纳滨对虾的生长性能,但0.4 mg kg-1以上水平的添加有助于增强免疫和消化功能,并调节肠道微生物群组成。
**论文解读:饲料中添加CpG ODNs对凡纳滨对虾生长、免疫、消化及肠道微生物的影响**
**研究背景与问题**
凡纳滨对虾(*Litopenaeus vannamei*)是全球广泛养殖的甲壳动物,在海水养殖和国际贸易中占据重要地位。集约化养殖虽提高了生产效率,但也使对虾暴露于病原感染、环境波动、高密度养殖及营养失衡等多重生物与非生物胁迫因子下,导致免疫能力下降、氧化还原稳态失衡、消化吸收功能受损,最终降低生长性能、饲料利用率和存活率。因此,开发支持免疫、抗氧化防御、消化功能和肠道稳态的营养策略对虾类养殖可持续发展至关重要。功能性饲料添加剂(如益生菌、益生元、植物源生物活性化合物及免疫刺激剂)已被广泛研究。其中,含非甲基化CpG基序的合成寡脱氧核苷酸(CpG ODNs)可模拟微生物DNA的免疫刺激信号,在脊椎动物中激活模式识别受体(PRR)介导的信号通路,刺激先天性和适应性免疫。在水生动物中,CpG ODNs已被报道能增强病原抵抗、提高免疫和抗氧化酶活性、调节免疫相关基因表达并改善应激耐受。在甲壳动物中,前期研究多集中于固定添加水平下的序列筛选或机制表征,但对多序列复合CpG ODNs制剂的剂量-效应关系、有效添加范围及最适添加水平仍缺乏了解。此外,不同添加水平是否引发协调性或终点特异性的反应(如饲料利用、消化功能、免疫状态、疾病抵抗、肠道微生物及宿主转录调控)尚不清楚。基于此,研究人员假设多序列复合CpG ODNs制剂的分级添加可诱导凡纳滨对虾生理、免疫、微生物和转录状态产生剂量依赖且可能非线性的响应。本研究旨在评估分级添加该制剂对凡纳滨对虾生长性能、免疫状态、消化功能、疾病抵抗、肠道微生物组成及转录组反应的影响,为开发绿色、安全、高效的功能性饲料添加剂提供理论依据,并减少养殖中对抗生素和化学疗法的依赖。论文发表在《Animals》。
**主要技术方法**
研究人员设计了一种复合CpG ODNs,将五种已知免疫刺激序列(ODN1651、ODN2395、ODN2006、ODN2216、ODN1681)的CpG基序区域串联排列。以鱼粉、豆粕、花生粕、玉米蛋白粉为蛋白源,玉米油、大豆卵磷脂、鱼油为脂源,配制六种等氮等脂饲料,分别添加0、0.1、0.4、1.6、6.4、25.6 mg kg
-1 CpG ODNs,对应C0、C0.1、C0.4、C1.6、C6.4、C25.6组。随机选取540尾初始体重0.30±0.02 g的健康凡纳滨对虾,每组3个重复(每重复30尾),饲养于0.3 m
3水槽中,每日投喂4次,为期8周。饲养结束后,采集血淋巴、血细胞和肠道样本,测定血清免疫和抗氧化指标(溶菌酶LZM、酸性磷酸酶ACP、碱性磷酸酶AKP、超氧化物歧化酶SOD、酚氧化酶PO、天冬氨酸氨基转移酶AST、丙氨酸氨基转移酶ALT、丙二醛MDA)、肠道消化酶(胰蛋白酶、淀粉酶、脂肪酶)活性;进行副溶血弧菌(1.0×10
6 CFU g
-1)和WSSV(1.0×10
5 copies g
-1)攻毒试验;采用16S rDNA测序分析肠道微生物群落;利用Illumina HiSeq 2000平台进行血细胞转录组测序,并通过qPCR验证差异表达基因(DEGs)。所有数据采用SPSS 22.0进行单因素方差分析(ANOVA)及Duncan多重比较,攻毒存活率用Kaplan-Meier曲线和log-rank检验。
**研究结果**
**3.1 生长性能**
与对照组相比,C1.6组饲料转化率(FCR)显著降低,但初始体重、终末体重、增重率(WGR)、存活率、特定生长率(SGR)在各组间无显著差异。基于WGR和SGR的回归分析预测最适添加量分别为12.65和12.75 mg kg
-1。
**3.2 攻毒试验**
副溶血弧菌攻毒后,各组存活率随时间下降,但72 h时组间无显著差异。WSSV攻毒后120 h,C25.6组存活率显著高于对照组,其他组无显著差异。
**3.3 血清生化指标**
与对照组相比,C6.4和C25.6组LZM活性显著升高;C25.6组AKP活性显著升高;各添加组ACP活性均显著升高,C6.4组最高;除C0.1组SOD、C0.1和C0.4组CAT外,CpG ODNs添加组SOD、PO、CAT活性均显著升高,C6.4组SOD和CAT最高,C1.6组PO最高;C0.1组AST活性显著升高;C0.4组ALT活性显著升高,但C1.6、C6.4、C25.6组ALT活性显著降低;除C0.1组外,各添加组MDA含量均显著降低。
**3.4 肠道消化酶活性**
C1.6、C6.4、C25.6组胰蛋白酶、淀粉酶、脂肪酶活性均显著升高,其中C1.6组胰蛋白酶和脂肪酶最高,C6.4组淀粉酶最高;C0.4组胰蛋白酶和淀粉酶显著升高,但脂肪酶无显著差异;C0.1组无显著变化。总蛋白含量组间无差异。
**3.5 肠道微生物群落**
**3.5.1 多样性与丰富度**:基于β多样性的主坐标分析(PCoA)显示不同添加水平影响肠道微生物群落结构。α多样性分析表明,CpG ODNs添加组Sobs、ACE、Chao1指数显著高于对照组,Shannon和Simpson指数无显著差异。
**3.5.2 组成**:门水平上,变形菌门、拟杆菌门、浮霉菌门、疣微菌门为优势菌群;CpG ODNs添加组浮霉菌门相对丰度显著升高(C1.6除外)。属水平上,弧菌和发光杆菌相对丰度显著降低(C0.1组弧菌除外),而鲁杰氏菌(*Ruegeria*)在C0.4、C6.4、C25.6组显著升高。
**3.6 转录组测序分析**
**3.6.1 组装与比对**:测序质量良好,平均GC含量>49.80%,Q20>97.17%,Q30>92.28%,比对率>88.65%。
**3.6.2 DEGs分析**:C0 vs C0.1组检测到3200个DEGs(2612上调,588下调);C0 vs C0.4组1629个(680上调,949下调);C0 vs C1.6组2015个(1154上调,861下调);C0 vs C6.4组8294个(3081上调,5213下调);C0 vs C25.6组1606个(806上调,800下调)。300个DEGs为所有比较组共有。
**3.6.3 GO富集分析**:DEGs注释到51个二级GO子类,涉及细胞过程、代谢过程、生物调节、信号转导、催化活性、转录因子活性等。
**3.6.4 KEGG富集分析**:DEGs分布于41个KEGG子类,涵盖代谢、有机系统、人类疾病、遗传信息处理、细胞过程和环境信息处理六大类。C6.4 vs C0组前20条通路覆盖全部六大类;C0.4、C1.6、C6.4、C25.6组共同显著富集AMPK信号通路和JAK-STAT信号通路。
**3.6.5 qPCR验证**:随机选取12个DEGs进行qPCR,表达趋势与转录组测序一致。
**讨论与结论**
讨论部分指出,饲料中添加CpG ODNs(>0.1 mg kg
-1)未显著改善生长性能,但基于回归分析提示存在潜在剂量依赖趋势,与中华绒螯蟹研究结果的差异可能源于物种、发育阶段、基础饲料、培养条件及对免疫刺激剂的敏感性不同。消化酶活性增强解释了C1.6组FCR降低的原因,但整体生长优势未显现。CpG ODNs(25.6 mg kg
-1)显著提高了非特异性免疫酶活性和WSSV攻毒后存活率,但对副溶血弧菌攻毒无显著保护,可能因弧菌感染需更复杂的抗菌效应机制,而CpG ODNs优先诱导抗病毒免疫。肠道微生物方面,CpG ODNs(>0.4 mg kg
-1)增加了微生物丰富度,降低了机会致病菌(弧菌、发光杆菌)丰度,提高了有益菌(鲁杰氏菌)丰度。转录组分析显示,CpG ODNs诱导的基因表达呈非线性模式,且多个剂量组共同富集AMPK和JAK-STAT信号通路,提示其通过多通路调节免疫调控能力。研究存在局限性:高添加区间(6.4~25.6 mg kg
-1)缺少中间剂量,每组独立水槽数仅3个,统计效力有限,实验在高度控制条件下进行且仅8周,长期效果及商业规模下的成本效益未知。
**研究结论**:饲料中添加CpG ODNs未显著改善凡纳滨对虾的生长性能;但添加25.6 mg kg
-1 CpG ODNs增强了对WSSV攻毒的抵抗力;饲料中添加0.4 mg kg
-1以上水平的CpG ODNs显著提高了消化和免疫酶活性,改善了肠道微生物组成,并诱导了有益的免疫相关转录组反应。