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一种模块化γδ TCR-T平台,结合KRAS pMHC靶向功能与可重复使用的mRNA引导重定向技术

《Journal of Hematology & Oncology》:A modular γδ TCR-T platform combining KRAS pMHC targeting with re-dosable mRNA engager redirection

【字体: 大 中 小 】 时间:2026年08月01日 来源:Journal of Hematology & Oncology 47.8

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  摘要当抗原表达发生变化或限制性的人类白细胞抗原(HLA)等位基因丢失时,实体瘤常常能够逃避免疫系统中经TCR工程改造的αβ T细胞。相比之下,γδ T细胞可通过非肽类/主要组织相容性复合体(MHC)信号,如磷酸化抗原和应激配体,来识别细胞功能异常,因此可被开发为异体疗法。尽管肿瘤

  

摘要

当抗原表达发生变化或限制性的人类白细胞抗原(HLA)等位基因丢失时,实体瘤常常能够逃避免疫系统中经TCR工程改造的αβ T细胞。相比之下,γδ T细胞可通过非肽类/主要组织相容性复合体(MHC)信号,如磷酸化抗原和应激配体,来识别细胞功能异常,因此可被开发为异体疗法。尽管肿瘤内的γδ T细胞特征与多种癌症患者的更好预后相关,但γδ T细胞的识别范围较广,其受体同样在胸腺中经过选择。不过,γδ T细胞的特异性并非依赖于特定的驱动突变pMHC表位。因此,我们探讨了是否有一种高亲和力、无需共受体的αβ TCR,能够在保留内源性γδ TCR功能的同时,将致癌驱动因子的特异性转移到γδ T细胞上。我们将KRASG12V/HLA-A*11:01 TCR A11v基因导入初级人类γδ T细胞中。这些工程化细胞同时表达转基因αβ TCR和内源性γδ TCR,能够在体外和体内杀死KRASG12V/HLA-A*11:01+肿瘤细胞。为应对可能因HLA-A*11:01丢失而产生的耐药性,我们使用了编码分泌型间皮素×CD3(M5)双特异性T细胞衔接分子的mRNA脂质纳米颗粒(LNP)。LNP-M5可产生循环中的TCE,引导γδ A11v T细胞及多克隆旁观者T细胞去攻击间皮素+靶标,同时还能增加体内γδ A11v T细胞的数量。在携带混合HLA-A*11:01+和HLA-A*11:01???KRASG12V肿瘤的人源化小鼠中,仅使用γδ A11v T细胞只能实现暂时性控制,而加入LNP-M5后则能获得完全缓解并延长生存期。由此可见,这种两步式疗法结合了恒定的驱动因子靶向与可调控的定向作用,同时解决了TCR疗法面临的限制性HLA等位基因丢失问题。它提供了一种现成的试剂,便于基于KRAS的疗法应用,并且还能再次递送该试剂。

当抗原表达发生变化或限制性的人类白细胞抗原(HLA)等位基因丢失时,实体瘤常常能够逃避免疫系统中经TCR工程改造的αβ T细胞。相比之下,γδ T细胞可通过非肽类/主要组织相容性复合体(MHC)信号,如磷酸化抗原和应激配体,来识别细胞功能异常,因此可被开发为异体疗法。尽管肿瘤内的γδ T细胞特征与多种癌症患者的更好预后相关,但γδ T细胞的识别范围较广,其受体同样在胸腺中经过选择。不过,γδ T细胞的特异性并非依赖于特定的驱动突变pMHC表位。因此,我们探讨了是否有一种高亲和力、无需共受体的αβ TCR,能够在保留内源性γδ TCR功能的同时,将致癌驱动因子的特异性转移到γδ T细胞上。我们将KRASG12V/HLA-A*11:01 TCR A11v基因导入初级人类γδ T细胞中。这些工程化细胞同时表达转基因αβ TCR和内源性γδ TCR,能够在体外和体内杀死KRASG12V/HLA-A*11:01+肿瘤细胞。为应对可能因HLA-A*11:01丢失而产生的耐药性,我们使用了编码分泌型间皮素×CD3(M5)双特异性T细胞衔接分子的mRNA脂质纳米颗粒(LNP)。LNP-M5可产生循环中的TCE,引导γδ A11v T细胞及多克隆旁观者T细胞去攻击间皮素+靶标,同时还能增加体内γδ A11v T细胞的数量。在携带混合HLA-A*11:01+和HLA-A*11:01???KRASG12V肿瘤的人源化小鼠中,仅使用γδ A11v T细胞只能实现暂时性控制,而加入LNP-M5后则能获得完全缓解并延长生存期。由此可见,这种两步式疗法结合了恒定的驱动因子靶向与可调控的定向作用,同时解决了TCR疗法面临的限制性HLA等位基因丢失问题。它提供了一种现成的试剂,便于基于KRAS的疗法应用,并且还能再次递送该试剂。

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