利用UHPLC-Orbitrap MS进行前生物化学分析:优化检测核糖、核碱基、核苷、核苷酸及短RNA寡聚体的方法

《Journal of Chromatography A》:Prebiotic Chemistry Analysis with UHPLC-Orbitrap MS: Optimizing protocols to detect ribose, nucleobases, nucleosides, nucleotides, and short RNA oligomers

【字体: 大 中 小 】 时间:2026年08月07日 来源:Journal of Chromatography A 4.0

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  •UHPLC-Orbitrap MS可在一次分析中检测19种RNA标准物。•金属保护型HILIC技术能提升核苷酸峰的质量。•碳酸氢铵可让ATP峰更加清晰,并提升信号强度。•核苷酸磷酸化程度越高,信号越弱。•高盐浓度下的HILIC技术能更好检测AMP寡聚体。引言实验性前生物化学研究

  
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    UHPLC-Orbitrap MS可在一次分析中检测19种RNA标准物。
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    金属保护型HILIC技术能提升核苷酸峰的质量。
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    碳酸氢铵可让ATP峰更加清晰,并提升信号强度。
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    核苷酸磷酸化程度越高,信号越弱。
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    高盐浓度下的HILIC技术能更好检测AMP寡聚体。

引言

实验性前生物化学研究旨在为生命起源假说提供依据,通常会探讨信息聚合物是先于自我维持的代谢网络出现,还是反之[1]。在关于生命起源于信息的第一类假说中,RNA世界假说较为常见,但并未被普遍接受[[2], [3], [4], [5]]。该假说认为地球上的最初生命是由在池塘环境中形成的能够自我复制的核糖核酸构成的。要证明这一假说的合理性,关键在于在模拟早期地球条件的实验室中合成RNA。火花放电法(即米勒-尤里实验)和等离子体实验是研究形成RNA的前生物化学原料的常用方法[[6], [7], [8], [9], [10]]。这类实验面临的一个主要技术难题是,如何找到一种准确且灵敏的方法来分析实验中的池塘混合物,从而确定其中究竟产生了何种物质。由于前生物化学实验可能产生仅在质量上类似RNA、但缺乏核糖、核碱基或磷酸基团、因而并非完整RNA的半组装分子,结构确定性至关重要。液相色谱-质谱法是一种能够区分分子结构的分析方法,但由于极性差异以及保留时间相近的原因,该方法在分离RNA的各组分——如核碱基、核苷、核苷酸和短RNA寡聚体时存在困难[[11], [12], [13]]。在本研究中,我们利用超高性能液相色谱-Orbitrap MS这种高分辨率、高灵敏度的仪器,为分析前生物化学溶液奠定了基础。我们研究了多种参数和方案,以优化分离效果和检测灵敏度,包括色谱柱和洗脱梯度、溶剂选择、电离模式以及碰撞能量等。本研究旨在为那些希望使用此类仪器分析RNA构成成分的实验室提供参考。目前的研究重点是利用分析标准物开发分析方法,尚未对实际前生物化学样本的分析性能进行评估。
早期用于分析核碱基、核苷、核苷酸和短RNA寡聚体的方法包括凝胶电泳和核磁共振波谱法。虽然凝胶电泳操作简单且成本低廉,但它只能提供分子大小的大致信息,无法确定复杂反应混合物中各种产物的确切结构[14]。核磁共振波谱法虽能提供有价值的结构信息,但其成本较高,且对于含量较低的分析物灵敏度不足[15]。此外,前生物化学实验产生的反应混合物十分复杂,会导致核磁共振谱图中出现大量重叠峰。液相色谱-质谱法的出现带来了重大突破,如今已被广泛应用,它结合了高效的分离能力和精确的结构解析功能,大幅提升了检测限和选择性[[16], [17], [18], [19], [20]]。
在各类现代分析技术中,UHPLC因其更高的分辨率、更短的分析时间以及更好的峰分离效果而成为首选方法[18,[21], [22], [23], [24], [25]]。与传统的高性能液相色谱系统相比,后者的工作压力通常在400巴左右,而UHPLC系统的压力可高达1000巴以上。这一特点使得可以使用粒径更小的色谱柱,进而提升色谱效率、峰容量以及分析时间[18]。当UHPLC与高分辨率质谱仪(如Orbitrap系列)结合使用时,还能进一步提升检测能力,因为它具有极高的质量精度、更好的结构解析能力,以及对低含量分析物更高的灵敏度[16,26]。
目前用于分析核碱基、核苷和核苷酸的液相色谱最常用的是反相液相色谱法,该方法采用非极性固定相,具有高度的通用性、准确性和灵敏度[[27], [28], [29]]。然而,核苷酸及其相关的磷酸化化合物极性很强,在常规反相色谱条件下往往保留能力较弱。为解决这一问题,研究人员开始使用亲水作用液相色谱法,该方法能更好地保留极性分析物。在各类亲水作用液相色谱柱中,酰胺基色谱柱因能与水基流动相兼容,且能够保留腺苷一磷酸、二磷酸和三磷酸等含磷酸的分析物,而被广泛使用[20,24,27]。不过这类色谱柱也存在一些缺陷:有研究表明某些核苷酸(如ADP、ATP)的保留时间不稳定,且会出现峰拖尾现象[18,30,31]。这些问题凸显出在全面分析RNA构成成分时,需要进一步优化色谱柱的选择。为克服这些局限,人们开发出了新的液相色谱硬件和色谱柱技术,以减少磷酸化分析物与金属表面的相互作用。本研究中使用的Atlantis Premier BEH Z-HILIC色谱柱采用了MaxPeak高性能表面技术,该技术旨在最大限度地减少含磷酸化合物的吸附,从而提升色谱回收率和峰形质量[13,30]
除了色谱柱技术方面的进步,流动相选择的改进也进一步提升了核苷酸分析的效果。在许多研究中,铵类添加剂因能够改善峰形、提高电离效率,以及减少质谱分析中的离子抑制效应,而被视为理想的缓冲剂[25,32]。与甲酸铵和甲酸这类替代品相比,醋酸铵和碳酸氢铵能更好地保留和分离核苷酸,因此成为现代液相色谱-质谱分析方法中需要重点考虑的因素[22,24,25]。
在本研究中,我们开发并优化了利用UHPLC-Orbitrap MS检测RNA构成成分的分析方案。我们针对色谱柱和洗脱梯度、溶剂选择、电离模式以及碰撞能量等关键参数进行了评估,旨在建立一套稳定的分析框架。在确定最优分析方案时,我们主要考虑了三个因素:1)所有色谱峰都能实现完全且同步的分离;2)峰形窄、对称且特征明显,便于定量分析;3)分析流程高效且重复性好,能够在大约30分钟内得出分析结果。通过不断优化这一分析方法,我们期望提升前生物化学实验中RNA构成成分的检测能力及其结构确认的准确性,同时为多个科学领域提供应用支持。

章节摘要

化学品与材料

超纯水是通过Milli-Q? IQ 7000超纯水净化系统(德国达姆施塔特的MilliporeSigma公司)制备的。Optima?级LC–MS用甲醇、乙腈、甲酸铵、醋酸铵、氢氧化铵、碳酸氢铵以及甲酸则由美国马萨诸塞州沃尔瑟姆市的Fisher Scientific公司提供。
所有的分析标准品都来自美国密苏里州圣路易斯的Sigma-Aldrich公司,只有AMP寡聚体是从英国剑桥的Horizon Discovery公司购买的。

结果与讨论

对于以下各项分析方案参数,我们的优化依据如下:1)实现核碱基、核苷、核苷酸以及短RNA寡聚体的完全分离;2)生成窄而对称、特征清晰的峰,便于定量分析;3)从开始到结束的整个分析过程能在大约30分钟内完成。

结论

通过优化色谱柱材质、流动相组成、电离模式、洗脱梯度以及碰撞能量,本研究建立了一套基于UHPLC–Orbitrap MS的 Workflow,可用于高可信度地分析与前生物化学相关的RNA类化合物。借助这套完善的分析方法,我们能够在单次分析中同时检测糖类、核碱基、核苷、环状核苷酸以及单磷酸、二磷酸和三磷酸化的核苷酸,同时还能保持

作者贡献

概念构思:B.K.D.P.和M.E.T.;方法设计:M.E.T.、M.C.A.和B.K.D.P.;实验实施:M.E.T.和M.C.A.;正式数据分析:M.E.T.、B.K.D.P.和M.C.A.;软件分析/定量:M.C.A.和M.E.T.;数据整理:M.E.T.和M.C.A.;数据可视化:M.E.T.和M.C.A.;原始稿件撰写:M.E.T.、M.C.A.、B.K.D.P.和I.M.;论文审阅与修改:M.E.T.、B.K.D.P.、M.C.A.和I.M.;项目监督:B.K.D.P.;资金筹集:B.K.D.P. 所有作者均已阅读并同意

备注

作者声明没有任何潜在的利益冲突。

数据可用性

本研究的相关数据已公开发布在X平台的(填入Zenodo链接)上。如有需要,也可提供补充数据。
支持性信息
包括以往研究的背景信息、化学结构数据,以及色谱柱优化、碰撞能量优化,还有使用其他溶剂分析复杂混合物的相关结果。

CRediT作者贡献说明

Mia E. Trodden:论文审阅与修改、原始稿件撰写、数据可视化、方法设计、正式数据分析、数据整理、概念构思。 Mariana C. Aguilar:论文审阅与修改、原始稿件撰写、数据可视化、方法设计、正式数据分析、数据整理。 Ishaan Madan:论文审阅与修改、原始稿件撰写。 Ben K.D. Pearce:论文审阅与修改、原始稿件撰写、项目监督、方法设计、概念构思。

利益冲突声明

作者声明不存在任何可能影响本文研究结果的已知利益冲突或个人关系。

致谢

本研究得到了Heising-Simons基金会以及普渡大学的资金支持。
Mia E. Trodden|Mariana C. Aguilar|Ishaan Madan|Ben K.D. Pearce
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