IL-44-预处理的小胶质细胞外囊泡减轻鱼藤酮诱导的SH-SY5Y细胞死亡:miR-191-5p的贡献作用

《ASN Neuro》:IL-4-Primed Microglial Extracellular Vesicles Attenuate Rotenone-Induced Cell Death in SH-SY5Y Cells: A Contributory Role for miR-191-5p

【字体: 大 中 小 】 时间:2026年08月10日 来源:ASN Neuro 4.4

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  小胶质细胞(microglia)通过释放携带调节性货物(如微小RNA(microRNAs, miRNAs))的小细胞外囊泡(small extracellular vesicles, sEVs)部分地促进中枢神经系统(central nervous syste

  
小胶质细胞(microglia)通过释放携带调节性货物(如微小RNA(microRNAs, miRNAs))的小细胞外囊泡(small extracellular vesicles, sEVs)部分地促进中枢神经系统(central nervous system, CNS)稳态和神经保护。白细胞介素-4(interleukin-4, IL-4)改变小胶质细胞状态和分泌输出;然而,从IL-44处理的小胶质细胞释放的sEVs是否能保护神经元免受毒性损伤,以及哪些货物介导这些效应,仍不清楚。在此,研究人员研究了来自IL-44处理的HMC3人小胶质细胞系的sEVs在SH-SY5Y细胞系中鱼藤酮诱导损伤模型中的保护作用,并检查了微小RNA-191-5p(microRNA-191-5p, miR-191-5p)对神经保护的贡献。小RNA测序揭示了IL-44-sEVs中独特的miRNA谱,其中miR-191-5p成为统计上最显著上调的候选分子。通过RT-qPCR证实了其富集。在SH-SY5Y细胞中检测到PKH67标记的sEV相关荧光,表明受体细胞摄取了小胶质细胞来源的sEVs。功能上,与未处理和对照sEV处理的细胞相比,用IL-44-sEVs预处理显著减少了鱼藤酮诱导的细胞死亡并保留了细胞形态。为了评估miR-191-5p的贡献,将IL-44-sEVs装载了miR-191-5p拮抗剂,这降低了miR-191-5p水平并部分减弱了IL-44-sEVs的保护作用。总之,这些发现表明,来自IL-44处理的HMC3小胶质细胞系的sEVs在体外减轻了SH-SY5Y细胞系中的鱼藤酮诱导损伤,并且miR-191-5p至少部分地贡献于此效应。
小胶质细胞(microglia)是中枢神经系统(central nervous system, CNS)的驻留免疫细胞,参与免疫监视、吞噬、促进神经元存活和突触形成等关键生理功能。白细胞介素-4(interleukin-4, IL-4)可改变小胶质细胞状态,促进其吞噬细胞和代谢残渣,并诱导神经营养因子支持神经元存活。小细胞外囊泡(small extracellular vesicles, sEVs)是几乎所有细胞释放的膜包被囊泡,在CNS中介导细胞间通讯,通过传递蛋白质、脂质和核酸(包括微小RNA(microRNAs, miRNAs))影响受体细胞功能。小胶质细胞来源的sEVs在阿尔茨海默病(Alzheimer’s disease, AD)、帕金森病(Parkinson’s disease, PD)和肌萎缩侧索硬化症(amyotrophic lateral sclerosis, ALS)等神经退行性疾病中发挥重要作用。然而,IL-4处理的小胶质细胞释放的sEVs是否能保护神经元免受毒性损伤,以及哪些miRNA货物介导这些效应,尚不清楚。为此,研究人员开展了本研究,旨在鉴定IL-4处理的人小胶质细胞系HMC3来源sEVs中富集的miRNA,并评估其在鱼藤酮(rotenone)诱导的SH-SY5Y细胞损伤模型中的神经保护作用。研究结果发表于《ASN Neuro》。

研究人员采用的主要技术方法包括:HMC3细胞(源自美国典型培养物保藏中心, ATCC)经10 ng/mL IL-4处理24小时,通过超速离心从条件培养基中分离sEVs;使用小RNA测序(next-generation sequencing, NGS)分析miRNA表达谱,并通过RT-qPCR验证miR-191-5p水平;通过Western blot检测sEV标志物(CD9、CD81、CD63)和非sEV标志物(calnexin),利用纳米颗粒追踪分析(nanoparticle tracking analysis, NTA)测定粒径分布,以及扫描透射电镜(scanning transmission electron microscopy, STEM)观察形态;采用PKH67荧光标记sEVs并观察SH-SY5Y细胞摄取;通过碘化丙啶(propidium iodide, PI)染色评估细胞死亡;使用Lipofectamine RNAiMAX将miR-191-5p拮抗剂(antagomir)装载入sEVs以抑制miR-191-5p;通过miRWalk等数据库预测靶基因,并进行基因本体(Gene Ontology, GO)和京都基因与基因组百科全书(Kyoto Encyclopedia of Genes and Genomes, KEGG)通路富集分析。

研究结果如下:

**IL-4诱导HMC3小胶质细胞及HMC3来源sEVs的表征**:通过RT-qPCR证实,IL-4处理增加HMC3细胞中CD206(经典IL-4响应标志物)和HLA-DR的表达。Western blot显示sEVs中CD9、CD81和CD63阳性,而calnexin阴性,表明无细胞污染。NTA分析显示sEVs直径在100–250 nm,呈多峰分布。STEM成像观察到典型的杯状、膜包被囊泡形态。

**IL-4诱导后HMC3细胞sEVs中miR-191-5p表达水平升高**:通过小RNA测序,在IL-4-sEVs和对照sEVs间鉴定出31个差异表达miRNA(21个上调,10个下调)。其中hsa-miR-191-5p是统计上最显著上调的候选分子,并经RT-qPCR验证其富集。GO和KEGG通路分析显示,这些差异miRNA的靶基因显著富集于核质运输、自噬、FoxO信号、神经营养因子信号、肿瘤坏死因子(tumor necrosis factor, TNF)信号等通路,以及阿尔茨海默病、帕金森病等神经退行性疾病相关通路。miRNA-mRNA网络分析预测了hsa-miR-191-5p的30个候选靶基因。

**PKH67标记的HMC3来源sEVs在SH-SY5Y细胞中被检测到**:通过PKH67荧光标记和显微镜观察,约80%的SH-SY5Y细胞在孵育24小时后呈现PKH67阳性荧光,表明sEVs被受体细胞有效摄取。

**IL-4-sEVs减轻鱼藤酮诱导的神经元细胞死亡**:通过PI染色,鱼藤酮(100 μM)处理使SH-SY5Y细胞死亡比例达33.69%,而IL-4-sEVs预处理显著降低细胞死亡(与鱼藤酮组相比),而对照sEVs无保护作用。同时,IL-4-sEVs预处理还保留了细胞形态。

**hsa-miR-191-5p与IL-4-sEVs对细胞死亡的神经保护作用相关**:通过将miR-191-5p拮抗剂装载入IL-4-sEVs,RT-qPCR证实miR-191-5p水平显著降低。在鱼藤酮诱导的损伤模型中,IL-4-sEVs处理显著减少细胞死亡(45.20%降至较低水平),而装载拮抗剂的IL-4-sEVs部分逆转了这种保护效应(细胞死亡比例回升),表明miR-191-5p部分介导了IL-4-sEVs的神经保护作用。

讨论部分:研究人员指出,IL-4处理HMC3细胞后CD206和HLA-DR均升高,其中HLA-DR升高可能归因于HMC3的永生化特性,CD206被视为主要IL-4响应标志物。IL-4-sEVs中miR-191-5p的富集与既往研究一致,后者在AD、多发性硬化、缺血性卒中等多种神经系统疾病中表达异常。miR-191-5p可能通过抑制NLRP3炎症小体或调节死亡相关蛋白激酶1(death-associated protein kinase 1, DAPK1)发挥保护作用,但本研究中未直接验证这些靶点。研究局限性包括:未进行实验验证直接下游靶基因;拮抗剂装载方法可能受到游离抑制剂或转染试剂残留的影响;缺乏miR-191-5p模拟物的gain-of-function实验;使用永生化细胞系(HMC3和未分化SH-SY5Y)限制了向初级神经元或体内模型的转化;仅关注单一候选miRNA,其他差异表达miRNA可能协同作用。结论部分翻译如下:本研究发现表明,来自IL-4处理的HMC3小胶质细胞系的sEVs在体外减轻了鱼藤酮诱导的SH-SY5Y细胞死亡,并且hsa-miR-191-5p至少部分地贡献于此保护效应。这些结果为进一步研究IL-4-sEV货物分子作为神经保护信号的潜在介质提供了依据。由于本研究仅对miR-191-5p进行了功能检查,其他差异表达的sEV miRNA的贡献仍有待确定。
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