《Fishes》:Optimizing RNA Delivery Strategies for Gilthead Seabream (Sparus aurata) SaB-1 Cells
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水产养殖是全球增长最快的食品生产部门,然而它面临着重大挑战,包括对养殖物种生物学理解的有限。在此背景下,细胞系在研究复杂性状及其遗传基础方面变得越来越重要。分子工具(如RNA干扰(RNAi)和基因组编辑)的体外应用可以帮助解析目标性状的分子基础。然而,缺乏体外
水产养殖是全球增长最快的食品生产部门,然而它面临着重大挑战,包括对养殖物种生物学理解的有限。在此背景下,细胞系在研究复杂性状及其遗传基础方面变得越来越重要。分子工具(如RNA干扰(RNAi)和基因组编辑)的体外应用可以帮助解析目标性状的分子基础。然而,缺乏体外操作方案限制了该领域的进展。在此,研究人员优化了源自金头鲷(Sparus aurata)的SaB-1细胞中的RNA转染方案,金头鲷是地中海水产养殖中最重要的养殖物种之一。尽管其重要性,但迄今为止对该物种的体外研究很少。研究人员的实验结果表明,在该细胞系中,RNA递送可以通过电穿孔或基于FUGENE?-SI的化学转染实现,尽管电穿孔导致较低的存活率(约35%,而化学转染为76%)。最后,作为概念验证,两种递送策略均在CRISPR/Cas9介导的gfap基因编辑中进行了测试,编辑效率约为10%。该研究为水产养殖功能基因组学提供了有用的方法学进展,提供了能够实现基因组编辑策略的RNA递送方法,并可加速金头鲷的分子研究和性状改良。
**论文解读:金头鲷SaB-1细胞RNA递送策略的优化与应用**
**研究背景与问题**
水产养殖是全球增长最快的食品生产部门,2022年水产养殖占全球水生动物产量的51%,首次超过捕捞渔业。金头鲷(Sparus aurata)是南欧产量最高的养殖鱼类,经济价值仅次于欧洲鲈鱼,但对其生理、病原易感性等生物学特性的理解仍有限。基因沉默和基因组编辑技术(如RNA干扰(RNAi)和CRISPR/Cas9)是解析基因功能、改良动物健康与生长的重要工具,但体外模型的应用受到缺乏高效核酸递送方案的制约。目前,金头鲷仅有16个细胞系,其中SaB-1是唯一源自脑组织的神经干细胞系,可用于研究神经相关疾病(如病毒性神经坏死VNN),但此前仅少数研究涉及核酸递送,缺乏系统优化的RNA递送方案。因此,研究人员开展本研究,旨在优化SaB-1细胞中的RNA递送策略,为功能基因组学提供方法学基础。论文发表在《Fishes》。
**主要关键技术方法**
研究人员使用荧光标记的tracrRNA-ATTO
?488作为报告RNA,通过流式细胞术(CytoFLEX)评估递送效率(以FITC通道荧光阳性细胞百分比表示),并用MTT法测定细胞活力。样本来源为SaB-1细胞系(RRID: CVCL_A9H7),源自金头鲷。电穿孔采用Neon NxT电穿孔系统,化学转染使用FUGENE
? SI试剂。作为概念验证,研究人员将Cas9 mRNA和sgRNA(靶向gfap基因)通过两种优化方案递送,通过Sanger测序和TIDE分析(Tracking of Indels by Decomposition)评估编辑效率。
**研究结果**
**3.1 电穿孔导致高RNA递送但低细胞存活率**
研究人员测试了三种RNA浓度(10、20、30 pmol)与三种电穿孔参数(1400 V 20 ms 1脉冲;1400 V 20 ms 2脉冲;1650 V 15 ms 2脉冲)的组合,发现30 pmol RNA搭配1650 V 15 ms 2脉冲获得最高荧光阳性细胞比例(67.05% ± 15.22%),但细胞存活率整体较低(约30%)。进一步优化参数(包括1700 V 10 ms 3脉冲)后,该条件达到最高递送效率(75.55% ± 23.24%),且显著优于1400 V 20 ms 1脉冲。两种重悬缓冲液(buffer R和Opti-MEM)对递送效率和存活率无显著影响,表明Opti-MEM可替代buffer R以降低成本。
**3.2 使用FUGENE
? SI实现高RNA递送和细胞存活率**
化学转染测试了0.1–30 pmol RNA浓度,发现单独RNA(无FUGENE
? SI)时转染效率<1%;加入FUGENE
? SI后,≥2.5 pmol RNA即可获得>80%荧光阳性细胞,10 pmol RNA时达到最高效率(92.32% ± 2.86%),且细胞存活率较高(75.76% ± 4.96%)。RNA浓度是影响存活率的主要因素,而非转染试剂。该结果提示10 pmol RNA是未来基因沉默实验的合适起始浓度。
**3.3 优化方案在CRISPR/Cas9基因组编辑中的验证**
两种优化方案用于递送CRISPR/Cas9组分(Cas9 mRNA和sgRNA)以编辑gfap基因。转染后第4天,电穿孔和FUGENE
? SI的编辑效率分别为12.1% ± 5.68%和10.1% ± 6.47%,无显著差异;第7天时效率分别为10.7% ± 3.96%和5.85% ± 2.28%,仍无显著差异,表明编辑细胞比例稳定。尽管编辑效率中等,但稳定存在提示未来可通过单细胞分离扩增获得均匀编辑的克隆。
**讨论与结论**
研究人员比较了两种递送方法:电穿孔虽能高效递送RNA,但细胞毒性大(仅约30%存活),适合递送多种货物(如核糖核蛋白RNP);FUGENE
? SI化学转染效率更高(>90%)、存活率更高(约76%),但可能受限于大分子(如Cas9 mRNA)的共递送效率。本研究首次系统优化了金头鲷细胞系中裸RNA的电穿孔递送,并首次在鱼类细胞系中测试FUGENE
? SI。研究结论:总之,电穿孔和化学转染(FUGENE
? SI)均是适用于金头鲷SaB-1脑细胞系RNA递送的方法,尽管电穿孔导致相对较高的细胞死亡率。本研究展示的实验表明,在所测试的条件中,最佳的RNA电穿孔条件需要30 pmol RNA和1700 V、10 ms、3个脉冲。对于化学试剂FUGENE
? SI的RNA递送,仅需10 pmol RNA即可实现。作为概念验证,两种方法均用于CRISPR/Cas9递送以编辑gfap,获得了约10%的编辑效率。该研究为水产养殖功能基因组学提供了有用的方法学进展,提供了新的策略,有助于加速金头鲷的分子研究和性状改良。