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CRISPR-Cas9技术可促进橙色壶菌中的同源基因敲入,而破坏DNA连接酶IV基因则能阻止转化现象的发生
《Scientific Reports》:Homologous knock-in processes facilitated by CRISPR-Cas9 in Aurantiochytrium and disrupting the gene for DNA ligase IV prevents transformation events
【字体: 大 中 小 】 时间:2026年08月15日 来源:Scientific Reports 4.9
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摘要本研究探讨了用于Aurantiochytrium limacinum的先进分子育种技术,这是一种真核微生物,因可用于工业生产DHA和虾青素而具有重要价值。我们首先利用CRISPR-Cas9系统同时破坏两个基因:crtIBY,这是一种作为视觉标记的多功能类胡萝卜素合成基因;以及
本研究探讨了用于Aurantiochytrium limacinum的先进分子育种技术,这是一种真核微生物,因可用于工业生产DHA和虾青素而具有重要价值。我们首先利用CRISPR-Cas9系统同时破坏两个基因:crtIBY,这是一种作为视觉标记的多功能类胡萝卜素合成基因;以及lig4,它参与非同源末端连接反应。这种基因破坏使得野生型橙色菌落变成了白色菌落(Δlig4-ΔcrtIBY-TA#6),表明类胡萝卜素的生成已经停止。随后,我们通过使用单链寡脱氧核苷酸模板修复crtIBY基因,成功实现了标记物的重新利用,从而使菌落恢复橙色表型(Δlig4-TB#18)。进一步研究Δlig4菌株(TB#18)后发现,与野生型菌株相比,仅使用含有两个crtIBY同源区域的博来霉素抗性表达盒时,其整体转化效率显著下降。然而,当在电转过程中将博来霉素抗性表达盒与CRISPR-Cas9核糖核蛋白结合使用时,Δlig4菌株(TA#6和TB#18)通过双交叉事件实现的同源重组效率却高于野生型菌株。这些结果表明,虽然Lig4对于抵抗zeocin的转化过程很重要,但破坏NHEJ途径有助于实现更精确的基因定位。本研究证明了CRISPR-Cas9系统可作为研究A. limacinum功能基因组学和代谢工程的强大工具。