肌醇在产蛋鸡活性胃肠道微生物群中的作用:品系比较

《Journal of the Science of Food and Agriculture》:myo-Inositol's role in laying hens’ active gastrointestinal microbiota: a strain comparison

【字体: 大 中 小 】 时间:2026年08月16日 来源:Journal of the Science of Food and Agriculture 4.0

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  背景:肌醇(myo-inositol, MI)是一种环醇,参与细胞代谢和植酸降解,但研究人员对其在产蛋鸡胃肠道(gastrointestinal tract, GIT)微生物群中的影响仍知之甚少。本研究调查了梯度日粮MI补充对两个商业产蛋鸡品系活性GIT微生物

  
背景:肌醇(myo-inositol, MI)是一种环醇,参与细胞代谢和植酸降解,但研究人员对其在产蛋鸡胃肠道(gastrointestinal tract, GIT)微生物群中的影响仍知之甚少。本研究调查了梯度日粮MI补充对两个商业产蛋鸡品系活性GIT微生物群落的影响。结果:Lohmann Brown Classic(LB)和Lohmann LSL-Classic(LSL)产蛋鸡被饲喂补充0、1、2或3 g MI kg?1饲料的日粮。通过16S rRNA基因扩增测序(基于cDNA)评估了来自嗉囊、十二指肠、回肠和盲肠的623个黏膜和食糜样本的活性微生物群。微生物群落组成主要由GIT部位(R2=0.43)决定,其次是宿主品系(R2=0.03)和样本类型(R2=0.02)。MI补充解释了较小比例的方差,但显著影响了特定分类群,尤其是在嗉囊和盲肠。总体而言,66个扩增子序列变异(amplicon sequence variant, ASV),包括Limosilactobacillus、Bacteroides和Roseburia的成员,在不同MI浓度间存在差异。观察到品系依赖性响应,LB产蛋鸡的黏膜和食糜群落之间显示出更大的分离,而LSL产蛋鸡在十二指肠和回肠食糜中表现出更多MI响应的ASV。相关性分析揭示了Ligilactobacillus与产蛋数和蛋黄MI浓度之间的关联,以及Alistipes与蛋重之间的关联。结论:日粮MI补充诱导产蛋鸡活性GIT微生物群的局部和品系依赖性改变。尽管这些效应与宿主基因型和GIT部位相比是适度的,但研究结果首次提供了MI-微生物群相互作用与产蛋性状潜在相关性的证据。? 2026 The Author(s). Journal of the Science of Food and Agriculture published by John Wiley & Sons Ltd on behalf of Society of Chemical Industry.
肌醇在产蛋鸡活性胃肠道微生物群中的作用:品系比较

论文解读

**研究背景与问题**

肌醇(myo-inositol, MI)是一种环醇,广泛存在于动植物体内,以游离形式或结合于磷脂和肌醇磷酸酯中,参与细胞信号传导、渗透调节和脂质代谢等生理过程。肠道通过完全降解植酸释放MI的能力取决于宿主黏膜酶和微生物酶活性。日粮补充游离MI可提高产蛋鸡肠道食糜中的MI浓度,但MI对肠道微生物群的影响尚不清楚。某些肠道细菌具有利用MI作为碳源的遗传机制,可能在肠腔MI浓度较高时获得竞争优势。产蛋鸡胃肠道(gastrointestinal tract, GIT)具有不同的形态和生理特征,导致不同GIT部位形成复杂的微生物群落。肠道微生物群显著影响鸡的生理状态、生产力和整体性能,较高的分类多样性和平衡的群落结构通常与改善的消化功能、营养消化率和抗病性相关。先前研究表明,日粮和鸡遗传品系相互作用影响微生物群组成。例如,钙磷供应变化对Lohmann Brown Classic(LB)和Lohmann LSL-Classic(LSL)品系的微生物群落影响不同,品系×日粮相互作用也在高纤维日粮下被观察到。此外,GIT微生物群组成与产蛋性能相关,高产蛋与高丰度的Bacillota、Pseudomonadota和Lactobacillus相关,而低产蛋则与较高的α多样性和更复杂的群落结构相关。本研究旨在表征LB和LSL产蛋鸡在梯度MI补充日粮下,来自嗉囊、十二指肠、回肠和盲肠的黏膜和食糜的活性微生物群落。研究人员旨在确定日粮MI补充是否改变活性GIT微生物群,以及响应是否因品系、GIT部位和样本类型而异。由于日粮MI可能直接影响微生物代谢,研究人员采用基于cDNA的16S rRNA基因扩增测序靶向代谢活性微生物群而非总微生物群落。该研究发表在《Journal of the Science of Food and Agriculture》。

**主要技术方法**

研究样本来源于240只LB和LSL雌性雏鸡,在标准条件下饲养至26周龄后转移至个体代谢单元,按随机完全区组设计,每品系和日粮处理设10只重复。日粮为玉米-豆粕型,分别补充0、1、2、3 g MI kg?1饲料,饲喂4周。收集产蛋数、平均蛋重、蛋黄和蛋清MI浓度、日采食量等数据。屠宰时,从每只鸡的嗉囊、十二指肠、回肠和盲肠收集配对黏膜和食糜样本(共80只鸡,计划640个样本,最终623个样本用于分析)。采用Trizol试剂提取RNA,经DNase处理去除基因组DNA,反转录合成cDNA,对16S rRNA基因V1-V2区域进行扩增测序(NovaSeq 6000平台)。生物信息学分析使用Qiime2,通过DADA2识别扩增子序列变异(amplicon sequence variant, ASV),基于Silva数据库进行分类注释。采用置换多元方差分析(permutational multivariate analysis of variance, PERMANOVA)评估群落组成差异,线性模型鉴定MI响应的ASV,Spearman相关分析探索微生物属与生产性状及MI代谢参数的关联。

**研究结果**

**GIT部位和品系驱动活性微生物群结构**

通过PERMANOVA分析整体数据集,发现GIT部位解释了最大变异(R2=0.43),其次是宿主品系(R2=0.03)和样本类型(R2=0.02)。非度量多维尺度分析(non-metric multidimensional scaling, NMDS)显示,在ASV水平上,不同MI浓度对应的中心点呈现不均匀空间分布,且品系特异性聚类模式在小肠中出现。LB产蛋鸡在小肠黏膜中,不同MI浓度导致更大的中心点离散,表明其对日粮的微生物响应更动态;而LSL产蛋鸡聚类更稳定。盲肠样本主要按品系分组,表明该区域活性微生物群在品系间差异大于MI浓度间差异。

**日粮MI诱导分类群特异性变化,但缺乏一致剂量-响应**

在属水平上,线性模型未发现显著差异。但在ASV水平上,66个ASV在不同MI浓度间存在显著差异,其中主要属于Limosilactobacillus(11个ASV)和Bacteroides(10个ASV)。大多数MI相关差异出现在嗉囊和盲肠中,且无一致剂量-响应模式。例如,在LB嗉囊黏膜中,多个Limosilactobacillus ASV(如ASV818 Limosilactobacillus pulli)在MI0和MI1间差异显著;在LSL嗉囊食糜中,ASV389(Lactobacillus crispatus)在MI0和MI1间差异显著。在小肠中,LB产蛋鸡仅发现1个ASV(Ligilactobacillus aviarius)在回肠食糜中
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