一种具有E蛋白融合环突变的寨卡病毒疫苗通过CD8+ T细胞提供保护

《Nature Microbiology》:A Zika virus vaccine with E protein fusion loop mutations protects via CD8+ T cells

【字体: 时间:2026年08月27日 来源:Nature Microbiology 18.7

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  目前尚无有效的寨卡病毒(ZIKV)疫苗。候选疫苗以ZIKV包膜(E)蛋白为主要靶点,该蛋白是抗ZIKV中和抗体(nAbs)的主要靶标。研究人员利用DNA和RNA平台,比较了表达野生型(WT)前膜蛋白(prM)和E蛋白(Z-prM/E-WT)或带有融合环(FL)

  
目前尚无有效的寨卡病毒(ZIKV)疫苗。候选疫苗以ZIKV包膜(E)蛋白为主要靶点,该蛋白是抗ZIKV中和抗体(nAbs)的主要靶标。研究人员利用DNA和RNA平台,比较了表达野生型(WT)前膜蛋白(prM)和E蛋白(Z-prM/E-WT)或带有融合环(FL)突变(Z-prM/E-FLM)的病毒样颗粒疫苗,这些突变可限制感染中的抗体依赖性增强。两种疫苗在C57BL/6 Ifnar1?/?小鼠中均诱导了有效的抗感染保护,但机制不同。Z-prM/E-WT疫苗诱导了针对未成熟和成熟ZIKV病毒颗粒的nAbs,而Z-prM/E-FLM疫苗中的突变损害了prM切割,导致抗体反应欠佳,无法中和成熟病毒颗粒。在两个小鼠模型中进行的血清转移和T细胞耗竭实验表明,CD8+ T细胞对于Z-prM/E-FLM诱导的短期保护是必要且充分的,而抗体和CD8+ T细胞均参与了Z-prM/E-WT诱导的长期保护。研究结果揭示了CD8+ T细胞在主要由nAb导向的prM/E基ZIKV疫苗介导的保护中发挥了意想不到的作用。研究还表明,仅依赖CD8+ T细胞的抗体中心型ZIKV疫苗提供的保护是短暂的,而能同时诱导保护性抗体和CD8+ T细胞的疫苗提供的保护是持久的。
**研究背景与问题**
寨卡病毒(Zika virus, ZIKV)属于黄病毒属(Orthoflavivirus),与登革病毒(dengue virus, DENV)同属,主要通过伊蚊叮咬传播,也可经性传播和垂直传播。ZIKV感染可导致胎儿畸形(如小头畸形和视觉异常),并可能引起长期神经系统问题。目前尚无获批的ZIKV疫苗,许多候选疫苗靶向E蛋白以诱导中和抗体(neutralizing antibodies, nAbs)。然而,针对一种黄病毒产生的交叉反应抗体可能通过抗体依赖性增强(antibody-dependent enhancement, ADE)加重异源黄病毒感染,这是ZIKV疫苗开发的关键挑战。E蛋白EDII结构域中的融合环(fusion loop, FL)区域是免疫优势表位,但主要诱导弱中和性、促进ADE的交叉反应抗体。因此,研究人员设计了携带FL突变(T76R、Q77E、W101R和L107R)的prM/E基疫苗(Z-prM/E-FLM),以降低ADE风险,但其免疫保护机制尚不明确。本研究旨在比较Z-prM/E-WT和Z-prM/E-FLM疫苗在抗体及T细胞应答方面的免疫原性,并阐明FLM疫苗的保护机制。

**研究方法与关键结论**
研究人员利用DNA和RNA(复制子RNA-脂质纳米颗粒,LNP)平台,在C57BL/6野生型(WT)小鼠、C57BL/6 Ifnar1?/?小鼠(干扰素α/β受体缺陷)和HLA-B*0702 Ifnar1?/?小鼠中开展免疫和攻毒实验。通过血清转移、CD8+ T细胞耗竭和过继转移实验,结合中和抗体检测、流式细胞术、Western blot及AlphaFold2结构预测,系统评估了疫苗诱导的保护机制。论文发表在《Nature Microbiology》,主要结论包括:Z-prM/E-FLM疫苗通过CD8+ T细胞(部分依赖IFN-γ)提供短期保护,而Z-prM/E-WT疫苗通过抗体和CD8+ T细胞共同提供长期保护;FL突变损害了prM切割,导致诱导的抗体无法有效中和成熟ZIKV病毒颗粒,从而改变了保护机制。

**主要关键技术方法**
本研究采用的关键方法包括:构建pVAX1载体DNA疫苗和基于甲病毒复制子的RNA-LNP疫苗,分别表达Z-prM/E-WT或Z-prM/E-FLM;在C57BL/6 Ifnar1?/?和HLA-B*0702 Ifnar1?/?小鼠模型(来源于Jackson Laboratories、华盛顿大学圣路易斯分校和La Jolla免疫研究所)中进行免疫和攻毒;通过血清被动转移、CD8+ T细胞耗竭(使用抗CD8单克隆抗体)和过继转移实验验证保护机制;利用DC-SIGN细胞中和实验和Vero-hfurin细胞来源成熟病毒检测中和抗体;流式细胞术分析脾脏T细胞产生IFN-γ、TNF、IL-2及脱颗粒标志物CD107a;Western blot检测prM切割效率;AlphaFold2模拟E蛋白和prM/E异二聚体结构。

**研究结果**
**1. Z-prM/E-WT和Z-prM/E-FLM DNA疫苗的构建与验证**
通过Western blot和免疫荧光显微镜验证,两种疫苗均能在293T细胞中成功表达E蛋白,但Z-prM/E-FLM疫苗表达的E蛋白不被针对FL构象表位的4G2抗体识别,符合预期。

**2. Z-prM/E-WT和Z-prM/E-FLM DNA疫苗具有高免疫原性**
在C57BL/6-WT和Ifnar1?/?小鼠中,两种疫苗诱导的抗ZIKV E IgG滴度和50%中和活性(NT50)滴度相似,且均显著高于对照组。CD4+和CD8+ T细胞应答(包括多功能细胞亚群)也无显著差异,表明两种疫苗在细胞免疫原性上相当。

**3. Z-prM/E-WT和Z-prM/E-FLM DNA疫苗诱导短期保护**
在攻毒后3天,两种疫苗均显著降低血清和组织中的ZIKV感染性颗粒和RNA水平,并保护小鼠免受致死剂量ZIKV攻击(存活率、临床评分和体重减轻)。但Z-prM/E-FLM疫苗诱导的CD8+ T细胞应答(特别是IFN-γ+和IFN-γ+CD107a+亚群)显著高于Z-prM/E-WT疫苗组。

**4. Z-prM/E-WT而非Z-prM/E-FLM DNA疫苗提供长期保护**
在末次免疫后12周攻毒,Z-prM/E-WT疫苗组小鼠组织中感染性病毒和RNA水平显著降低,而Z-prM/E-FLM疫苗组与对照组无显著差异,尽管两者抗体和T细胞水平相似,表明FLM疫苗的保护是短暂的。

**5. Z-prM/E-WT和Z-prM/E-FLM DNA疫苗通过不同机制保护**
血清转移实验:Z-prM/E-WT疫苗免疫血清可保护受体小鼠,而Z-prM/E-FLM疫苗血清无效,说明FLM疫苗诱导的抗体缺乏体内保护能力。CD8+ T细胞耗竭实验:耗竭CD8+ T细胞后,Z-prM/E-FLM疫苗的保护作用显著减弱,而Z-prM/E-WT疫苗的保护不受影响。CD8+ T细胞过继转移实验:来自Z-prM/E-FLM疫苗免疫小鼠的CD8+ T细胞足以降低受体小鼠的病毒载量,且IFN-γ中和抗体可部分逆转此保护效果。这些结果表明,Z-prM/E-FLM疫苗的保护完全依赖于CD8+ T细胞(部分通过IFN-γ),而Z-prM/E-WT疫苗的保护由抗体和CD8+ T细胞共同介导。

**6. 基于RNA复制子的Z-prM/E-FLM疫苗诱导CD8+ T细胞介导的保护**
在HLA-B*0702 Ifnar1?/?小鼠中,RNA-LNP形式的Z-prM/E-FLM疫苗同样通过CD8+ T细胞提供保护,血清转移无效,CD8+ T细胞耗竭消除保护,过继转移降低病毒RNA,证实该机制不依赖疫苗平台和MHC I类分子。

**7. Z-prM/E-FLM疫苗诱导的抗体对成熟ZIKV中和活性降低**
与Z-prM/E-WT疫苗相比,Z-prM/E-FLM疫苗免疫血清对Vero-hfurin细胞来源的成熟ZIKV病毒的中和滴度显著降低,仅36%的小鼠血清检测到中和活性,表明FLM疫苗诱导的抗体无法有效中和成熟病毒颗粒。

**8. ZIKV E蛋白FL区域突变损害prM切割**
Western blot显示,Z-prM/E-FLM疫苗产生的病毒样颗粒中主要含有未切割的prM蛋白,而Z-prM/E-WT疫苗颗粒中同时存在M和prM。AlphaFold2结构预测表明,FL突变(引入正电荷)改变了prM furin切割位点附近的局部电荷环境,从而阻碍了prM切割,进而影响成熟病毒中和抗体的产生。

**讨论与结论**
本研究揭示了CD8+ T细胞在prM/E基ZIKV疫苗保护中的关键作用,尤其是在缺乏有效成熟病毒中和抗体的情况下。Z-prM/E-FLM疫苗通过诱导CD8+ T细胞(部分依赖IFN-γ)提供短期保护,但此T细胞依赖性保护是短暂的,而Z-prM/E-WT疫苗通过抗体和CD8+ T细胞提供持久保护。FL区域不仅含有诱导ADE抗体的免疫优势表位,还通过影响prM切割参与成熟病毒中和抗体的产生。这些结果对黄病毒疫苗设计具有直接意义:旨在降低ADE风险的FL突变可能无意中损害了中和抗体质量及保护持久性,即使短期保护得以保留。未来研究应探索增强CD8+ T细胞保护持久性的策略,例如新型佐剂或结合结构抗原与细胞表位。

**研究结论翻译**:总之,本研究提供了机制性证据,表明CD8+ T细胞(至少部分通过产生IFN-γ)在缺乏针对成熟ZIKV病毒颗粒有效nAb反应的情况下,对Z-prM/E-FLM疫苗诱导的保护发挥关键作用。然而,这种T细胞依赖性保护是短暂的:尽管Z-prM/E-WT疫苗接种提供持久保护,而Z-prM/E-FLM介导的免疫在12周后便无法维持,尽管抗体和T细胞水平相当,这强调了抗体和T细胞应答之间的相互作用是长期疫苗效力的关键决定因素。未来研究应探索增强保护性CD8+ T细胞应答持久性的策略,可能通过选择新型佐剂或结合结构抗体抗原与细胞表位或靶蛋白。研究结果还揭示了E蛋白FL区域先前未被充分认识的双重作用:它含有诱导ADE抗体的免疫优势表位,但在结构上也是高效prM切割以及随后产生能中和成熟病毒颗粒的抗体所必需的。总的来说,这些结果对黄病毒疫苗的设计具有直接意义,表明旨在降低ADE风险的突变可能无意中损害了nAb质量和保护持久性,即使短期保护得以保留。
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