Streptomyces hydrogenans EM-F5 中的好氧异化硝酸盐还原为铵:代谢见解、生理活性及驱动因素

《Applied and Environmental Microbiology》:Aerobic dissimilatory nitrate reduction to ammonium in Streptomyces hydrogenans EM-F5: metabolic insights, physiological activity, and driving factors

【字体: 大 中 小 】 时间:2026年08月27日 来源:Applied and Environmental Microbiology 4.2

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  异化硝酸盐还原为铵(DNRA)可在土壤中保留氮并减少温室气体排放。然而,细菌厌氧DNRA存在一定缺陷,如需要严格厌氧条件、管理复杂且成本高昂。研究人员分离到一株新的放线菌菌株EM-F5,并鉴定为*Streptomyces hydrogenans*。菌株EM-F

  
异化硝酸盐还原为铵(DNRA)可在土壤中保留氮并减少温室气体排放。然而,细菌厌氧DNRA存在一定缺陷,如需要严格厌氧条件、管理复杂且成本高昂。研究人员分离到一株新的放线菌菌株EM-F5,并鉴定为*Streptomyces hydrogenans*。菌株EM-F5表现出广泛的环境适应性(pH 6.20–9.20,接种量0.10–0.50 × 108 CFU/mL,溶解氧3.30–7.25 mg/L,温度18℃–38℃)。以淀粉为碳源时,菌株EM-F5通过好氧DNRA实现了98.04%的硝酸盐还原率和54.89%的铵生产效率,而在厌氧条件下仅转化37.35%的硝酸盐。电子传递系统活性(ETSA)、三磷酸腺苷(ATP)和烟酰胺腺嘌呤二核苷酸(NADH/NAD+)分别达到0.11 μg O2 g?1 min?1、29.73 μmol/g和5.24,证实了好氧DNRA的高效性。硝酸还原酶(NR)和亚硝酸还原酶(NIR)的比活性分别为0.323和0.018 U/mg蛋白,证实其在该DNRA途径中的关键催化功能。氮平衡(氮损失25.46%)实验进一步证实菌株EM-F5的好氧DNRA途径为NO3?-N→NO2?-N→NH4+-N。这些发现扩展了当前对放线菌中DNRA的认识,并为土壤中的氮循环提供了有前景的微生物资源。
论文解读:好氧DNRA放线菌*Streptomyces hydrogenans* EM-F5的代谢、生理活性及驱动因子

氮是生物体必需营养元素,土壤是作物获取氮的主要来源。然而,全球人口增长导致粮食需求激增,自然固氮不足以支持农业生产,约半数粮食供应依赖工业氮肥。过量施肥使土壤中盈余氮转化为硝酸盐,进而可通过反硝化或异化硝酸盐还原为铵(DNRA)等生物过程去除。反硝化将硝酸盐永久转化为氮气(N2),会造成氮损失并增加温室气体排放风险;而DNRA将硝酸盐还原为铵,有利于氮保留和回收利用。传统观点认为DNRA仅由厌氧或限氧环境中的细菌完成,例如*Desulfovibrio* sp. CMX在72小时厌氧培养中可将0.345 g/L硝酸盐转化为0.207 g/L铵,效率约60%;*Desulfovibrio vulgaris* AL-1等在21天内将32.7%–46%的硝酸盐(100 mg/L)转化为铵。但厌氧DNRA管理复杂、成本高。虽已有好氧条件下DNRA的报道,但普遍转化不完全或效率极低,如*Pseudomonas putida* Y-9在好氧下虽去除88.47%硝酸盐,但仅产生3.42 mg/L铵。因此,寻找能在好氧条件下高效进行DNRA的微生物资源具有重要意义。放线菌在堆肥、湿地和南极等环境中是DNRA的主要菌属,且能在高温堆肥条件下进行DNRA,并具有高效产铵而不积累有害中间产物的潜力。然而,关于*Streptomyces hydrogenans*是否具备DNRA能力尚未见报道。本研究从中国贵州草海湿地分离到一株新的放线菌EM-F5,经形态学和16S rRNA基因测序鉴定为*Streptomyces hydrogenans*,系统研究了其好氧与厌氧条件下的DNRA特性、环境因子影响、生理活性及关键酶活性,论文发表在《Applied and Environmental Microbiology》。

研究人员采用的关键技术方法包括(不超过250字):菌株分离自中国贵州草海湿地土壤,通过富集培养、形态学观察和16S rRNA基因测序鉴定;在好氧和厌氧条件下以淀粉为碳源比较DNRA活性;采用单因子实验评估温度、pH、溶解氧、接种量以及S2?/NO3?、Fe2+/NO3?、NO2?/NO3?比例对DNRA的影响;测定电子传递系统活性(ETSA)、三磷酸腺苷(ATP)、NADH/NAD+水平;测定硝酸还原酶(NR)和亚硝酸还原酶(NIR)比活性;通过氮平衡实验分析氮素转化路径。

研究结果如下:

**菌株形态与分子鉴定**:通过高硝酸盐转化效率和铵积累为筛选标准,从草海湿地土壤中分离出目标菌株EM-F5。该菌落呈白色、圆形、边缘规则、表面干燥呈白粉状、不透明,革兰氏染色阳性,扫描电镜显示为长丝状杆,符合放线菌特征。16S rRNA基因序列与*Streptomyces hydrogenans* JCM 4771相似性最高(99.72%),邻接法系统发育树也表明其与*Streptomyces hydrogenans*亲缘关系最近。

**菌株EM-F5在好氧和厌氧条件下DNRA活性的差异**:好氧条件下,以淀粉为碳源时,48小时内硝酸盐几乎完全转化(99.86%),144小时铵积累量达到峰值,占还原硝酸盐的54.89%,全程未检出亚硝酸盐。氮平衡实验显示,144小时后铵产生量为44.43 mg/L,剩余硝酸盐5.11 mg/L,无亚硝酸盐,胞内氮为26.52 mg/L,氮损失仅25.46%,说明大部分硝酸盐转化为铵和胞内氮,证实为好氧DNRA。厌氧条件下,240小时内硝酸盐浓度从102.90 mg/L降至64.47 mg/L,转化率仅37.35%,亚硝酸盐从0.62 mg/L升至40.32 mg/L,而铵积累仅0.51 mg/L;氮平衡显示亚硝酸盐积累22.99 mg/L,铵仅2.34 mg/L,氮损失为0,NIR比活性仅0.004 U/mg protein,表明菌株EM-F5在厌氧条件下不能完成DNRA,仅能将部分硝酸盐转化为亚硝酸盐。

**环境因子对菌株EM-F5 DNRA能力的影响**:溶解氧实验中,DO为3.30–7.25 mg/L时硝酸盐转化效率均在96%以上,DO为7.25 mg/L时铵积累最高(52.37 mg/L,效率51.80%),而DO为2.39 mg/L时无DNRA能力,表明该菌株好氧DNRA对氧不敏感且在高氧下更强。温度实验中,18–38℃范围内硝酸盐转化效率均高于96%,铵积累随温度升高从28.05 mg/L升至53.85 mg/L(效率56.70%),说明温度升高有利于DNRA。pH实验中,pH 7.20时铵积累最高(55.13 mg/L),在pH 6.20–9.20范围内均具DNRA活性,而pH 5.20时几乎无活性。接种量实验中,0.10–0.50 × 108 CFU/mL范围内硝酸盐转化效率均大于98%,最适接种量为0.30 × 108 CFU/mL,铵积累达58.96 mg/L。S2?/NO3?实验中,S2?的添加抑制硝酸盐转化,浓度越高抑制越强;低比例初期抑制,后期可恢复,高比例持续抑制。Fe2+/NO3?实验中,Fe2+总体抑制DNRA,当比例≥6时无铵产生,推测低比例有利于DNRA,高比例转向反硝化。NO2?/NO3?实验中,当比例>1/4时菌株无DNRA能力;在低比例(1/8和1/16)下铵积累分别为11.89和35.88 mg/L。在总氮不变、不同NO3?/NO2?比例混合氮源条件下,336小时后各比例均产生较高铵(39.55–45.73 mg/L),且随硝酸盐比例升高铵产量增加,表明菌株EM-F5优先利用硝酸盐进行DNRA。

**菌株EM-F5好氧DNRA过程中的生理活性分析**:ETSA在96小时达到峰值0.1134 μg O2 g?1 min?1,并在96–240小时维持较高水平,保证电子高效传递。ATP浓度从48小时的3.84 μmol/g升至144小时的29.73 μmol/g,与铵产量显著正相关,表明高能量状态驱动DNRA。NADH/NAD+比值在96小时达到最高5.24,并在96–192小时维持在4.71–5.24之间,为硝酸盐还原提供充足还原力。这些生理指标共同证实菌株EM-F5通过协调电子传递、能量代谢和氧化还原平衡实现高效好氧DNRA。

**好氧DNRA相关酶活性分析**:NR比活性为0.323 U/mg protein,显著高于已报道的*P. putida* NP5和*Paracoccus denitrificans* ISTOD1(0.02 U/mg protein);NIR比活性为0.018 U/mg protein,与*Klebsiella pneumoniae* CF-S9(0.02 U/mg protein)和*Diaphorobacter* sp. PD-7(0.019 U/mg protein)相近,但略低于*Streptomyces mediolani* EM-B2(0.024 U/mg protein)。酶活性检测证明NR和NIR存在于菌株EM-F5中并催化DNRA代谢过程。

总结讨论部分:研究人员指出,菌株EM-F5在好氧条件下高效完成DNRA,与多数仅能在厌氧条件下进行DNRA的细菌不同。其高氧环境下的DNRA能力强于低氧,可能与独特的氧调控机制有关。温度升高可增强代谢活性从而促进DNRA;中性或微碱性pH有利于NrfA型DNRA。硫化物和铁离子的抑制作用与部分报道相反,可能归因于菌株调控基因的差异。在NO2?与NO3?共存时,菌株优先利用硝酸盐,且氮素总量增加有利于DNRA。这些发现拓展了放线菌好氧DNRA的认识,为硝酸盐污染土壤的生物修复提供了优良菌源。

研究结论:新型放线菌*Streptomyces hydrogenans* EM-F5分离自草海湿地,扩展了好氧DNRA菌株库。好氧条件下该菌基本完成硝酸盐还原,铵生产效率占转化硝酸盐的54.89%;厌氧条件下仅转化37.35%硝酸盐,部分转化为亚硝酸盐而非完全DNRA。此外,菌株EM-F5能在广泛环境条件下高效进行DNRA,且相比亚硝酸盐更倾向于利用硝酸盐。酶比活性、氮平衡和生理活性指标的测定进一步证明了其好氧DNRA的高效性。该研究为通过DNRA提高铵产量提供了基础数据,并为农业土壤的氮保留与循环提供了有前景的候选菌株。
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