基于hlyA的14种环介导等温扩增(LAMP)方法用于单核细胞增生李斯特菌快速检测的比较评价

《Frontiers in Microbiology》:Comparative evaluation of 14 hlyA-based loop-mediated isothermal amplification assays for the rapid detection of Listeria monocytogenes

【字体: 大 中 小 】 时间:2026年08月28日 来源:Frontiers in Microbiology 5.8

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  引言:食品中单核细胞增生李斯特菌(Listeria monocytogenes)的快速检测对于实施及时措施以减少食源性李斯特菌病及后续死亡至关重要。尽管文献中已有多篇靶向hlyA基因(listeriolysin O)的单核细胞增生李斯特菌LAMP方法报道,但尚

  
引言:食品中单核细胞增生李斯特菌(Listeria monocytogenes)的快速检测对于实施及时措施以减少食源性李斯特菌病及后续死亡至关重要。尽管文献中已有多篇靶向hlyA基因(listeriolysin O)的单核细胞增生李斯特菌LAMP方法报道,但尚未有独立的比较评价。方法:研究人员在封闭式OptiGene Genie II平台上采用统一协议(非各方法单独报道或优化条件),以FDA开发的靶向同一基因的LAMP方法为基准,评价14种hlyA基LAMP方法的性能。使用10倍系列稀释的参考菌株ATCC 19115测定灵敏度(检测限,LOD),使用50株单核细胞增生李斯特菌、20株其他李斯特菌属菌株和31株非李斯特菌属菌株分别评价特异性(包容性/排他性),并评估定量能力。结果与讨论:14种LAMP方法对ATCC 19115的LOD介于超过106细胞/反应(其中3种在最高测试浓度下未检出)至102细胞/反应,后者包含FDA LAMP方法。初始模板约100–102细胞/反应时包容性为20%–90%,而在较高模板浓度下选定的2种及FDA LAMP方法达100%包容性。14种方法排他性均为100%。定量能力相关系数R2为0.681–0.992。该对14种hlyA基LAMP方法的全面评价凸显了引物设计在实现快速、灵敏、特异检测这一重要食源性病原体以保障食品安全和公共卫生中的关键作用。
研究背景方面,单核细胞增生李斯特菌(Listeria monocytogenes)为革兰阳性兼性细胞内病原体,可在低温下生长成膜,污染即食食品与生鲜农产品,导致高致死率李斯特菌病,食品中快速高灵敏检测是食品安全重大需求。传统FDA细菌学分析手册(BAM)依赖培养分离与实时聚合酶链反应(real-time PCR)确认,商品化快速试剂盒则受设备成本高、操作复杂、食品基质抑制物影响大等限制。环介导等温扩增(LAMP)以链置换DNA聚合酶与4–6条引物在60–65°C一小时内外扩增至109拷贝,抗抑制性强、成本低,已在多种食源性病原菌中应用。hlyA基因编码李斯特溶素O,在单核细胞增生李斯特菌中高度保守,是LAMP最常用靶标,文献中已有十余种hlyA基LAMP引物集报道,但缺乏在同一条件下独立头对头比较其灵敏度、特异性与定量能力的评价,故研究人员开展本研究。
主要关键技术方法方面,研究人员构建包含50株单核细胞增生李斯特菌、20株其他李斯特菌属(L. grayi、L. innocua、L. ivanovii、L. seeligeri、L. welshimeri)及31株非李斯特菌属(含芽孢杆菌属、肠球菌属、大肠杆菌属、沙门菌属等)的特异性评价菌株队列,以参考菌株ATCC 19115作灵敏度评价;所有DNA按AOAC与FDA指南制备后,在OptiGene Genie II封闭管平台采用统一25 μL反应体系(GspSSD2.0等温预混液ISO-004、统一引物浓度比、65°C 30分钟扩增+退火扫描),以时间阳性点(Tp,峰值比率)与退火峰温(Ta)判读,Tp cutoff 20分钟为正向标准;统计用McNemar检验、双因素ANOVA与Tukey事后比较及R2线性评估。
研究结果部分,特异性小节显示:14种方法对51株排他性模板均100%排他;50株包容性面板在初始100–102细胞/反应下,FDA-2026、Huang-2015、Rivas-Macho-2023的POD(概率检出)最高(80%–90%),Tang-2011、Shan-2012、Wang-2012为0%(Shan-2012有Ta无Tp),提高模板浓度后前三者达100%包容性。灵敏度小节显示:Tang-2011、Shan-2012、Wang-2012即便最高浓度也无有效Tp;FDA-2026 LOD最低达102细胞/反应,Ye-2015、Huang-2015次之;双因素ANOVA表明引物集与DNA浓度及交互作用极显著(p<0.0001)。定量能力小节显示:Pisamayarom-2017、Huang-2015、Ma-2019、FDA-2026、Rivas-Macho-2023等R2达0.906–0.981;Wang-2011+Huang-2015A+Ye-2015+FDA-2026组可定量至102细胞/反应,Huang-2015B+Pisamayarom-2017+Ma-2019+Rivas-Macho-2023组至103细胞/反应,Wan-2012等三组仅至104且线性不显著,三套失败引物集无定量。
讨论部分总结:所有14种hlyA基LAMP排他性100%,与原始报道一致;包容性差异源于原研究多用生长极限高浓度模板、未遵AOAC推荐的10–100倍LOD浓度,致过往高估,本研究低浓度面板暴露出Tang-2011/Shan-2012/Wang-2012完全失效。灵敏度普遍低于原报,引物靶向区域多态性降低双链稳定性是主因,使用简并引物(如Rivas-Macho-2023)可缓解;Loop引物加速扩增,FDA-2026在Ma-2019同内外引物基础上加LB后灵敏度提升10倍、包容性改善。统一ISO-004预混与65°C 30分钟+严格Tp≤20分钟判读虽未还原各原法最优条件,但公平比较下近FDA/CVM(Ge et al., 2026)法综合最优。定量能力差异大,R2 0.681–0.992,强定量利于免增菌高值样本直接估量。
结论部分翻译:本工作对14种hlyA基单核细胞增生李斯特菌LAMP引物集的灵敏度、特异性和定量能力提供独立比较评价。尽管承认使用统一而稳健的LAMP协议比较所有方法有限制,但在本研究条件下近FDA/CVM法优于其余13种;Ye-2015与Huang-2015速度最优,Huang-2015与Rivas-Macho-2023包容性最优,Ye-2015、Huang-2015与Rivas-Macho-2023灵敏度突出,Wang-2011、Huang-2015与Ye-2015具定量优势。14种方法表现不一凸显食品安全实验室标准化选型的实用意义,多数方法需在真实食品基质与例常条件下进一步验证(如FDA LAMP已在软奶酪与生宠物粮验证)。研究推动LAMP作为有效筛查工具整合入单核细胞增生李斯特菌食品检测流程,服务主动监测与暴发调查。论文发表于《Frontiers in Microbiology》。
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