《Environmental and Experimental Botany》:Exogenous OPDA-induced stomatal closure is mediated by hydrogen peroxide and Ca2?+ in
Arabidopsis thaliana
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外源OPDA诱导的气孔关闭并不严格依赖于经典的ABA信号途径。OPDA触发的气孔关闭需要依赖RbohF的活性氧(reactive oxygen species, ROS)积累以及胞外Ca2+内流。OPDA结合蛋白ROC4在保卫细胞ROS产
外源OPDA诱导的气孔关闭并不严格依赖于经典的ABA信号途径。OPDA触发的气孔关闭需要依赖RbohF的活性氧(reactive oxygen species, ROS)积累以及胞外Ca2+内流。OPDA结合蛋白ROC4在保卫细胞ROS产生的上游发挥作用。OPDA激活了一个聚焦的保卫细胞转录程序,涉及NAC转录因子、氧化还原及胁迫相关基因。
论文解读:外源OPDA经ROC4、RbohF依赖的ROS产生和胞外Ca
2+内流调控拟南芥气孔关闭
茉莉酸(jasmonic acid, JA)及其生物活性结合物茉莉酸-异亮氨酸(jasmonoyl-isoleucine, JA-Ile)是来源于脂质的oxylipin类信号分子,在植物防御、发育和胁迫适应中发挥重要作用。在经典JA生物合成途径中,JA由环戊烯酮12-氧代植物二烯酸(12-oxo-phytodienoic acid, OPDA)在过氧化物酶体中经OPDA还原酶3(OPR3)和β-氧化转化生成。然而,越来越多的证据表明OPDA不仅是JA的前体,其本身也是一类独立的信号分子,参与种子休眠、胚胎发育和干旱适应等过程。已有报道显示OPDA可以诱导拟南芥等植物气孔关闭,但其下游信号传导机制仍不清楚。特别是OPDA是否必须依赖经典JA或脱落酸(abscisic acid, ABA)途径,以及其感知蛋白ROC4如何将信号传递至保卫细胞中的效应分子,此前尚未阐明。基于此,研究人员提出假说:OPDA诱导的气孔关闭涉及ROC4相关信号以及下游活性氧(reactive oxygen species, ROS)和Ca
2+依赖事件。该研究通过遗传学、药理学、细胞学及转录组学方法系统解析了这一过程。研究结果揭示了外源OPDA在经典JA和ABA途径受损条件下仍能诱导气孔关闭,并且该过程依赖于RbohF介导的过氧化氢积累和胞外Ca
2+内流,且ROC4位于ROS产生上游。该工作为理解OPDA调控气孔运动及植物水分利用效率提供了新的分子机制框架,论文发表于《Environmental and Experimental Botany》。
本研究采用的主要关键技术方法如下:以拟南芥Columbia(Col-0)和Landsberg erecta(Ler)为野生型,使用一系列相关突变体,包括JA合成及信号突变体(aos、opr3-3、opr2/3、coi1-30)、ABA相关突变体(nced3-2、aba2-1、pyr1/pyl1/2/4/5/8、abi1-1)、NADPH氧化酶突变体(rbohD、rbohF、rbohD/F)、蛋白激酶突变体cpk3/5/6/11、roc4突变体及35S::ROC4/roc4互补株系;突变体来源包括NASC及多个实验室共享。主要技术包括气孔开度显微测定、H
2DCF-DA荧光探针结合共聚焦显微镜检测保卫细胞H
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2,UPLC-MS/MS定量内源OPDA/JA/JA-Ile,以及RNA-seq和qRT-PCR转录组分析。
结果部分:
3.1 OPDA诱导的气孔关闭在JA和ABA相关突变体中的特征。研究人员通过不同浓度和时间处理确认10 μM OPDA处理1小时即可显著诱导野生型气孔关闭。在JA合成缺陷突变体aos、opr3-3、opr2/3以及JA受体突变体coi1-30中,OPDA仍能诱导与野生型相当的气孔关闭,说明该过程不严格依赖经典JA生物合成和COI1介导的JA信号。在ABA合成缺陷突变体nced3-2和aba2-1中,OPDA和ABA均能诱导关闭;而在ABA信号突变体pyr1/pyl1/2/4/5/8和abi1-1中,ABA失去诱导关闭能力,但OPDA依然有效。由此得出结论:外源OPDA诱导气孔关闭不严格需要经典JA途径和ABA核心信号途径。
3.2 RbohF是外源OPDA诱导H
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2积累和气孔关闭所必需的。利用H
2DCF-DA荧光探针检测保卫细胞H
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2,发现OPDA显著增加荧光信号。过氧化氢酶(CAT)、抗坏血酸(ASA)或NADPH氧化酶抑制剂DPI预处理可完全消除OPDA诱导的H
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2积累和气孔关闭。在rbohD突变体中OPDA仍能诱导H
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2增加和关闭,而rbohF及rbohD/F双突变体中这些反应均被显著抑制。说明RbohF在OPDA诱导的ROS产生中起主要作用。
3.3 胞外Ca
2+内流是外源OPDA诱导气孔关闭所必需的。用EGTA螯合胞外Ca
2+或LaCl
3阻断质膜Ca
2+通道后,OPDA诱导的气孔关闭被取消。在cpk3/5/6/11四突变体中,OPDA仍能诱导H
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2积累和气孔关闭,表明Ca
2+内流是必需的,但CPK3/5/6/11这些钙依赖蛋白激酶并非必需。
3.4 ROC4作用于OPDA诱导气孔关闭过程中H
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2产生的上游。在roc4突变体中,OPDA既不能诱导H
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2积累,也不能诱导气孔关闭;而在35S::ROC4/roc4互补株系中,这两种反应均恢复。因此ROC4是OPDA信号通路中位于ROS产生上游的关键组分。
3.5 opr3/coi1-30双突变体对OPDA的转录响应。为避免外源OPDA被OPR3转化为JA进而激活COI1信号,研究人员在opr3/coi1-30双突变体背景下进行RNA-seq分析,采用冰匀浆法制备富含保卫细胞信号的表皮碎片。结果鉴定出17个上调、3个下调的差异表达基因。其中NAC转录因子基因ATAF1、ATAF2和ANAC102显著上调,氧化还原相关基因GSTU7、OXI1,解毒相关基因UGT73B3/B5、CYP81D8/CYP89A5,以及ABA转运蛋白ABCG40也被诱导。qRT-PCR验证与RNA-seq结果一致。这些结果说明OPDA可触发一个选择性的早期转录反应,但该反应并不完全等同于纯化保卫细胞的反应。
讨论与结论:该研究结果表明,外源OPDA诱导的气孔关闭在实验条件下不严格依赖经典JA和ABA途径,但并不能排除与ABA信号网络之间存在交叉调节。RbohF而非RbohD特异介导了OPDA诱导的ROS产生,这可能与质外体碱化及离子通道激活等下游事件有关。胞外Ca
2+内流是OPDA信号所必需的,但CPK3/5/6/11不承担主要解码功能。ROC4可能通过影响细胞氧化还原状态参与信号传递,但其与RbohF之间的分子连接仍有待阐明。转录组分析鉴定的NAC转录因子和氧化还原/解毒相关基因为后续研究提供了候选因子。研究结论可翻译为:研究表明外源OPDA通过一种在测试条件下不严格需要经典JA和ABA途径的信号机制诱导气孔关闭。遗传和药理学分析表明,ROC4、RbohF依赖的过氧化氢积累和胞外Ca
2+内流是OPDA诱导气孔关闭的重要组分。尽管这些组分之间的精确分子关系仍有待阐明,但结果支持一个模型,即ROC4相关信号与OPDA诱导气孔关闭过程中RbohF依赖的ROS产生和Ca
2+内流相偶联。此外,对含有保卫细胞信号的冰匀浆表皮碎片的转录组分析揭示了一个对OPDA的选择性早期转录响应,其特征是NAC转录因子以及与氧化还原稳态、解毒和胁迫相关途径的基因被诱导。由于这些样品并非纯化的保卫细胞制剂,所识别的转录响应不能完全归因于保卫细胞。总之,这些发现建立了一个将OPDA信号与气孔调节中ROS产生、Ca
2+信号和早期转录响应联系起来的机制框架,扩展了对OPDA介导气孔信号的理解,并为后续研究提供了潜在的分子组分。