线粒体替代氧化酶(AOX)抑制导致Rumex K-1叶片CO2同化下降的光呼吸代谢受损机制

《Plants》:Impaired Photorespiratory Metabolism Underlies the Decline in CO2 Assimilation Induced by Alternative Oxidase Inhibition in Rumex K-1 Leaves

【字体: 时间:2026年09月08日 来源:Plants 4.1

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  在光呼吸条件下,光合碳同化要求叶绿体电子传递与线粒体氧化还原代谢紧密协调,而线粒体替代氧化酶(alternative oxidase,AOX)的贡献尚不清楚。研究人员用1 mM水杨基氧肟酸(salicylhydroxamic acid,SHAM)抑制Rumex

  
在光呼吸条件下,光合碳同化要求叶绿体电子传递与线粒体氧化还原代谢紧密协调,而线粒体替代氧化酶(alternative oxidase,AOX)的贡献尚不清楚。研究人员用1 mM水杨基氧肟酸(salicylhydroxamic acid,SHAM)抑制Rumex K-1叶片中的AOX途径,探讨线粒体替代呼吸对碳同化的贡献。AOX抑制对CO2同化造成非气孔限制,并降低光系统II(photosystem II,PSII)电子传递。低O2或高CO2可缓解CO2同化下降,而PSII光化学仍受抑;AOX抑制降低表观最大Rubisco羧化能力(Vcmax),但不显著改变支持核糖酮糖-1,5-二磷酸再生的电子传递能力上限(Jmax),表明主要限制位于PSII下游的光呼吸碳代谢。PSII电子通量、光合碳还原循环电子通量(Je(PCR))与光呼吸碳氧化循环电子通量(Je(PCO))均下降。AOX抑制在光照下而非黑暗下引起甘氨酸(glycine,Gly)积累并升高Gly/Ser比,说明光呼吸中线粒体Gly向丝氨酸(serine,Ser)转化受限。上述结果提示,AOX依赖的泛醇(ubiquinol)氧化有助于维持线粒体NADH再氧化与NAD+再生,从而支撑Gly-to-Ser转化与光呼吸碳回收。
研究背景方面,光合碳同化为植物生长和陆地生态系统碳输入的核心过程,需要捕光与电子传递同碳同化及其他耗电子过程所利用的ATP和NADPH相平衡。叶绿体、线粒体、过氧化物酶体与细胞质的代谢通讯,尤其是苹果酸-草酰乙酸(malate–oxaloacetate,Mal/OAA)穿梭,使线粒体电子传递可间接影响叶绿体氧化还原状态。在C3植物中,光呼吸使Rubisco加氧产生2-磷酸乙醇酸,并经叶绿体、过氧化物酶体和线粒体回收为3-磷酸甘油酸(3-phosphoglycerate,3-PGA)。线粒体替代氧化酶(AOX)从泛醌池接受电子,直接将泛醇氧化为水而不产生跨膜质子梯度,因而被看作缓冲泛醌氧化还原状态、维持细胞氧化还原平衡的调控性呼吸分支。已有遗传与生理证据表明AOX与光合性能有关,但在Rumex K-1这一非模式C3系统中,AOX抑制导致CO2同化下降的生理基础仍不清楚。该研究发表于《Plants》,旨在回答AOX抑制后碳同化下降是否主要来自气孔限制或PSII光化学缺陷,还是来自下游碳与光呼吸代谢障碍。
主要技术方法方面,研究人员以Rumex K-1(R. patientia × R. tianschanicus)为材料,以离体叶片经叶柄吸收1 mM SHAM处理,对照组含等量乙醇。气体交换用CIRAS-2便携式光合系统测定净CO2同化速率(Pn)、气孔导度(gs)、细胞间CO2浓度(Ci)及低O2与高CO2响应;叶绿素荧光用FMS-2调制荧光仪测定有效光系统II量子产额(ΦPSII),并依Valentini等方法估算PSII电子通量、光合碳还原循环电子通量Je(PCR)与光呼吸碳氧化循环电子通量Je(PCO);用Farquhar模型拟合Vcmax与Jmax;游离氨基酸用氨基酸自动分析仪定量Gly与Ser,并以叶绿素归一化计算Gly/Ser。样本为不同盆、不同植株的功能叶,每处理5个生物学重复。
研究结果部分,2. Results中首先展示光响应特征:AOX抑制后Pn在各光强下均较低,gs无明确差异,Ci在中等和高光下更高,叶肉导度(gm)无显著变化,说明限制主要为非气孔性。随后叶绿素荧光与电子通量结果显示,ΦPSII下降,ΦPSII/CO2同化表观量子产额(ΦCO2)比值升高,Je(PSII)、Je(PCR)与Je(PCO)均显著降低,表明PSII运行效率下降且电子用于碳还原与光呼吸碳氧化的能力减弱。低O2实验显示,21% O2下表观羧化效率(carboxylation efficiency,CE)被SHAM显著降低,而2% O2下无显著差异,说明光呼吸参与该限制。CO2响应曲线表明,随Ci升高SHAM与对照Pn差距缩小;SHAM使Vcmax降低18.8%,但Jmax无显著变化,ΦPSII全程仍较低,说明主要限制在PSII下游而非PSII本身。氨基酸结果显示,黑暗中Gly、Ser与Gly/Ser无处理差异;光照下SHAM使Gly与Ser含量升高且Gly/Ser比显著上升,提示线粒体Gly-to-Ser转化受限但未完全中断。
讨论部分总结中,研究人员指出AOX抑制造成Pn下降伴随ΦPSII与Je(PSII)降低,但ΦPSIICO2升高意味着碳同化受抑甚于电子传递,更符合下游碳代谢容量下降引起的反馈性光化学下调。低O2与高CO2缓解表型、Vcmax下降而Jmax不变,均支持限制位于光呼吸碳代谢。光照下Gly/Ser升高与甘氨酸脱羧酶复合体(glycine decarboxylase complex,GDC)和丝氨酸羟甲基转移酶(serine hydroxymethyltransferase,SHMT)通路相关:GDC反应产生NADH,需要NAD+再生;AOX虽不直接氧化NADH,但通过氧化泛醇维持泛醌池可接受上游电子,从而支撑线粒体NADH氧化与氧化还原平衡。AOX受抑时,若Mal/OAA穿梭与其余呼吸途径不足以补偿,线粒体NAD(H)趋于还原,NAD+不足,GDC–SHMT持续周转受限。光呼吸回流3-PGA减少可限制Calvin–Benson循环中间物补充,乙醛酸等中间物积累还可能降低Rubisco活化状态。该文提出,AOX抑制经“线粒体还原当量氧化受限→NAD+再生下降→Gly-to-Ser转化受限→光呼吸碳回收下降并影响Rubisco功能→CO2同化下降”的机制发挥作用。
研究结论部分译为:总体而言,研究结果支持这样一种机制模型,即AOX抑制可能限制线粒体还原当量氧化能力,制约光呼吸中Gly-to-Ser转化与碳回收,并最终降低CO2同化。这些发现表明,AOX抑制所造成的主要光合限制源于线粒体氧化还原稳态与光呼吸碳代谢之间协调关系被破坏,而非仅仅由光合电子传递受限引起。
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