光系统II突变体PsbA3-S264V的结构与功能分析

《Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - Bioenergetics》:Structural and functional analysis of a photosystem II mutant PsbA3-S264V

【字体: 大 中 小 】 时间:2026年09月08日 来源:Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - Bioenergetics 2.6

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   摘要光系统 II(PSII)通过光诱导的电子传递链催化水的氧化和氧气的释放,从而产生电子、质子和氧气。D1-S264 是一个位于 QB 结合位点附近的残基,已证实该残基的突变会对电子传递和放氧活性产生显著影响。在此,我们利用冷冻电子显微镜以 1.96 ? 分辨率分析了嗜热蓝细

  

摘要

光系统 II(PSII)通过光诱导的电子传递链催化水的氧化和氧气的释放,从而产生电子、质子和氧气。D1-S264 是一个位于 QB 结合位点附近的残基,已证实该残基的突变会对电子传递和放氧活性产生显著影响。在此,我们利用冷冻电子显微镜以 1.96 ? 分辨率分析了嗜热蓝细菌Thermosynechococcus elongatus突变体 PsbA3-S264V 的结构,结果显示碳酸氢根和 QB 结合区域周围的结构发生了显著变化。由于丝氨酸(Ser)变为缬氨酸(Val),QB 羰基氧与 S264 之间的氢键发生了改变,这使得 QB 的质子化途径从原来的通过 D1-H252 经由 D1-S264 到 QB 的路径,变为一条新的、更长且效率较低的路径,即通过 D1-H252 经由 D1-F265 到 QB。两个残基 D1-E244 和 D2-E242 的侧链取向发生了显著变化。其中,D2-E242 采用了两种构象,且两者均与原结构有较大偏差。所有这些变化导致了连接基质表面与 QB 的通道 A 和通道 B 的氢键网络发生改变,这些通道可能用于运输质子以质子化 QB。此外,等温滴定量热实验显示突变体 PSII 对 3-(3,4-二氯苯基)-1, 1-二甲基脲(DCMU)的结合亲和力降低,基于对 DCMU 结合态 PSII 的结构分析,这可能归因于突变体中 D1-F255 的结构旋转。这些发现为 D1-S264 在 QB 质子化及功能中的作用,以及在 DCMU 结合中的作用提供了宝贵的见解。

引言

光系统 II(PSII)是位于类囊体膜上的色素 - 蛋白复合物,执行一系列光诱导的电子传递反应,最终导致水分解为电子、质子和分子氧。通过这种方式,光能被转化为化学能,并生成分子氧;这两者对于地球上的生命生存至关重要 [1], [2], [3]。在蓝细菌中,PSII 由 20 个亚基组成,包括三个膜周边亚基和 17 个跨膜亚基,单体总分子量为 350 kDa,它在生理环境中以二聚体形式存在,总分子量约为 700 kDa [4], [5]。
PSII 反应中心叶绿素(Chls)P680 的激发启动了电荷分离和电子传递反应,电子从水传递到 QA 和 QB,这两个质体醌分子分别结合在反应中心蛋白 D2 和 D1 上。在这些醌受体中,QA 是单电子受体,而 QB 是双电子受体。在通过两个电子还原后,QB 通过从基质侧接受两个质子被还原为 QBH2,随后与类囊体膜中质体醌池中的游离醌进行交换。在 QA 和 QB 之间,有一个由碳酸氢根(BCT)和几个氨基酸残基配位的非血红素铁 [4], [5],该碳酸氢根与几个附近的氨基酸残基和水分子形成氢键 [4], [5], [6]。这些水分子和氨基酸残基形成延伸的氢键网络,将 QB 结合位点与基质(细胞质)侧连接起来,可能用于将质子从基质侧转移到 QB 以对其进行质子化。事实上,已经提出了两条质子传递途径。一条是垂直路径,从基质表面通过几个水分子,涉及 D1-E244、D1-Y246、D2-Y244、碳酸氢根和非血红素铁的配体之一 D1-H215,到达 QB 的头基 [4], [5], [6], [7], [8]。这条路径包含许多氨基酸残基和水分子,因此可能构成 QB 质子化的主要路径。另一条路径由 D1-S264、D1-H252(暴露于基质侧表面)以及可能的一到两个水分子介导,这条路径位于 QB 头基的侧面 [4], [5], [6], [7], [8]。
D1 由 psbA 基因编码,在蓝细菌中,存在多种形式的 psbA 基因 [9], [10], [11], [12], [13], [14], [15]。在嗜热蓝细菌Thermosynechococcus elongatus(T. elongatus)中,三个基因编码 D1 亚基:psbA1、psbA2 和 psbA3 [16],这些基因的差异表达使生物体能够适应各种生长条件。在正常生长条件下,表达 psbA1;然而,在高光等光胁迫条件下,psbA3 取代 psbA1 [17], [18], [19];在氩气诱导的微好氧条件下,诱导转录 psbA2 [13]。
在 D1 中 QB 结合位点周围的残基中,S264 引起了关注,因为它位于上述第二条氢键路径中,且其侧链与 QB 头基的远端氧形成氢键。已证实 S264 突变为其他残基会影响对结合 QB 位点从而阻断电子从 QA? 传递到 QB 的除草剂的抗性 [20], [21], [22], [23], [24], [25], [26],这可能与涉及 S264 残基的质子传递受阻有关 [27], [28]。此外,分子动力学模拟表明,D1-S264 在 QBH2 释放过程中发生重新取向,因此参与 QBH2/QB 的交换 [29], [30]。最近,利用嗜热蓝细菌T. elongatus 构建并表征了一个 D1-S264V 突变体 [8]。研究表明,在仅含 PsbA3 的菌株中,S264V 突变体具有野生型 26% 的放氧活性,而在具有 PsbA1 背景的相同突变体中几乎没有减少,并且与 PsbA1 菌株相比,PsbA3 菌株对除草剂的敏感性也大大降低。这些效应归因于突变体中电子从 QA? 传递到 QB 效率低下,这是由于 QB 对 QA? 的氧化较慢,以及缺乏或减缓与非血红素铁还原偶联的质子摄取所致 [8]。在 77 K 记录的光减黑暗差吸光谱中,观察到 PsbA3-S264V 在 440–460 nm 区域存在差异,这被解释为反映了 QA 周围氢键网络的重排 [8]。最后,突变体中除草剂的结合亲和力可能降低了。
在此,我们利用单颗粒冷冻电子显微镜(cryo-EM)以 1.96 ? 分辨率确定了嗜热蓝细菌T. elongatus 中 PsbA3-S264V 突变体的结构,该结构显示与 PSII 的仅含 PsbA3 结构相比,涉及 S264 的氢键网络发生了改变 [31]。我们还分析了突变体的 DCMU 结合结构以及通过等温滴定量热计(ITC)测得的 DCMU 结合亲和力,结果显示突变体 PSII 的 DCMU 结合减弱。基于这些结果,我们讨论了 S264 在 QB 结合及其质子化中的作用,以及在除草剂结合中的作用。

章节摘要

细胞培养与 PSII 纯化

从嗜热蓝细菌Thermosynechococcus elongatus 基因组 DNA 中删除了 psbA1 和 psbA2 基因,D1 亚基由 psbA3 基因编码 [8]。D1-S264V 突变体是在缺乏 psbA1 和 psbA2 的背景菌株中于 psbA3 基因中构建的,如前所述 [8],细胞在 DTN 培养基中 [32], [33] 于 5 L 体积下、光合有效光子通量密度(PPDF)为 10 μE photons m?2 s?1 的光强和 45 °C 的温度下培养。

突变体 PSII 的纯化

PsbA3-D1-S264V 突变体如前所述构建 [8],并按照“材料与方法”部分所述从突变体中纯化 PSII 二聚体。SDS-PAGE 分析显示,纯化的 PSII 包含所有主要亚基,如 CP47、CP43、D2、D1、PsbO、PsbV(Cyt c550)、PsbU(图 1A)。CN-PAGE 分析显示,虽然泳道上部仍残留少量有色复合物,这可能对应于少量 PSI 三聚体,但纯化的 PSII

讨论

本研究通过冷冻电子显微镜解析了 PsbA3-S264V 突变体 PSII 的结构,该结构显示突变位点周围以及 QB 结合口袋中的氨基酸残基结构发生了几处变化。D1-S264 与 D1-H252 和 QB 形成氢键,这可能作为从基质侧到 QB 的质子通道以对其进行质子化。然而,由于缬氨酸残基中 OH? 基团的缺失,S264V 不再能够与 D1-H252 和 QB 形成氢键。相反,

CRediT 作者贡献声明

Songbo Fan: 写作 – 初稿,可视化,验证,调查,形式化分析,数据管理。Yoshiki Nakajima: 验证,监督,调查,形式化分析,数据管理。Koji Kato: 监督,形式化分析,数据管理。Haowei Jiang: 调查,形式化分析。Pi-Cheng Tsai: 调查,形式化分析。Anqi Jia: 调查,形式化分析。Miwa Sugiura: 资源,调查,形式化分析。Jian-Ren Shen: 写作 – 审阅与编辑,

利益冲突声明

作者声明他们没有已知的竞争经济利益或个人关系,这些利益或关系可能被认为会影响本文所述的工作。

致谢

本研究由JSPS KAKENHI 项目(编号:JP22H04916(J.-R.S.),编号:24K21853(MS)以及日本学术振兴会形成日本顶尖研究大学计划(J-PEAKS)(项目编号:JPJS00420230010)支持。本工作还得到了冈山县立大学核心设施门户(CFPOU)(RIIS-n01)的支持,我们感谢冈山县立大学结构生物学国际研究中心协助收集冷冻电子显微镜数据。
Songbo Fan|Yoshiki Nakajima|Koji Kato|Haowei Jiang|Pi-Cheng Tsai|Anqi Jia|Miwa Sugiura|Jian-Ren Shen
冈山县立大学,冈山县,日本,环境与生命自然科学技术研究生院,跨学科科学研究研究所,前沿研究领域
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