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潘托辛A是一种核糖体合成并经翻译后修饰的肽(RiPP)天然产物,通过抑制组氨酸生物合成途径发挥抗生素活性。产生潘托辛A的基因簇包含两个推定生物合成酶PaaA和PaaB的编码基因。此前研究已表明PaaA能够修饰前体肽的EEN核心序列,生成与潘托辛A最终结构相似但
潘托辛A是一种核糖体合成并经翻译后修饰的肽(RiPP)天然产物,通过抑制组氨酸生物合成途径发挥抗生素活性。产生潘托辛A的基因簇包含两个推定生物合成酶PaaA和PaaB的编码基因。此前研究已表明PaaA能够修饰前体肽的EEN核心序列,生成与潘托辛A最终结构相似但有所不同的双环结构;迄今尚无关于PaaB的鉴定报道。本文中,研究人员确定了PaaA产物的结构,解决了此前结构表征中遗留的歧义。此外,研究人员证明该产物可被PaaB识别为底物,PaaB是一种Fe(II)和2-酮戊二酸依赖性酶,催化独特的1,4-脱氢反应以完成成熟的翻译后修饰。这些研究完整阐明了潘托辛A的生物合成途径及其成熟过程所涉及的各个步骤。
**潘托辛A生物合成途径的完整阐明——PaaA与PaaB的酶学表征**
天然产物因其治疗价值而备受关注,其生物合成过程是新型酶催化化学的重要来源。核糖体合成并经翻译后修饰的肽(RiPPs)是快速扩展的天然产物类别,虽结构和功能多样,但共享共同的生物合成路线:核糖体产生包含核心区、N端前导区(leader)和C端尾随区(follower)的前体肽,经一个或多个修饰酶加工后分泌为成熟产物。潘托辛A(Pantocin A)是首次从成团泛菌(*Pantoea agglomerans*)中分离得到的RiPP天然产物,是目前已知最小的RiPP之一,为由两个谷氨酸残基(E16和E17)衍生出罕见双环基序的三肽,通过抑制组氨酸生物合成途径中的L-组氨醇磷酸氨基转移酶而发挥抗生素活性。其生物合成基因簇编码四种多肽:30mer前体肽PaaP、两个推定生物合成酶PaaA和PaaB,以及参与宿主免疫的DMT型转运蛋白PaaC。生物信息学分析提示PaaA属于ThiF/E1样酶家族,PaaB属于Fe(II)/2-酮戊二酸依赖性(Fe/2OG)加氧酶。此前研究虽已表明PaaA以ATP依赖方式修饰PaaP的E16/E17并伴随80 Da质量损失,但产物结构存在2a或2b两种可能而无法区分;PaaB则完全未被表征。本研究旨在解决PaaA产物结构的歧义、首次表征PaaB的催化功能,从而完整阐明潘托辛A的成熟途径。该论文发表在《ACS Chemical Biology》。
研究人员采用的关键技术方法包括:将来自成团泛菌(*Pantoea agglomerans*)的*paaA*与*paaB*基因经密码子优化后在*Escherichia coli* BL21 DE3中异源表达,并经Ni亲和层析和尺寸排阻色谱纯化;以胰蛋白酶消化结合液相色谱-质谱联用(LCMS)及串联质谱(MS/MS)监测反应并定位修饰位点;运用多维核磁共振(NMR)波谱(COSY、TOCSY、HSQC、HMBC、NOESY)对产物进行全结构归属;利用厌氧操作进行PaaB酶活测定。样本来源为成团泛菌的基因簇,无临床样本队列。
**通过胰蛋白酶消化的LCMS证明PaaA活性。** 研究人员利用LCMS分析PaaP的胰蛋白酶消化产物,未修饰PaaP(1-30mer)经酶切产生1-13mer片段(m/z 735.86,[M+2H]
2+);PaaA反应后对应片段2-13mer的m/z降至695.86([M+2H]
2+),与80 Da质量损失一致,证实了PaaA的催化活性。纯化过程中发现PaaA产物对酸性条件敏感,长时间暴露于0.1%甲酸会生成+18 Da的降解产物,因此HPLC纯化时流动相中不添加甲酸。
**PaaA反应产物的结构表征。** 研究人员对纯化的2-13mer进行多维NMR分析,1H,13C-HSQC谱显示烯烃区仅有一个峰(δH 4.83 ppm,δC 103.0 ppm),与2a或2b结构相符。COSY和TOCSY谱显示该烯烃信号与相邻亚甲基(δ 2.44/2.83 ppm,δC 33.0 ppm)相关,此亚甲基又连接一个次甲基(δ 4.62 ppm,δC 58.3 ppm)。由于2a与2b中耦合体系高度对称,区分二者依赖于酰胺质子化状态:2b中E17的酰胺氮因N–C键形成而无质子,但E16的酰胺质子应存在;2a则无酰胺质子与烯烃信号相关。TOCSY谱显示烯烃信号(4.83 ppm)、相邻亚甲基及次甲基在酰胺区(约7.5–8.5 ppm)均无交叉相关,而双键另一侧的亚甲基和次甲基均在8.09 ppm处存在TOCSY相关,由此将PaaA产物明确判定为2a。该结果与PaaA以ATP依赖方式激活E16的机制一致,与Fleming等人的结论相符。
**PaaB以2-13mer为底物且反应导致2 Da质量损失。** 研究人员异源表达并纯化PaaB后,在含PaaB、铁、2-酮戊二酸(2OG)和氧气的体系中,2-13mer(m/z 695.85)转化为3-13mer(m/z 694.85,[M+2H]
2+),表明发生脱氢反应;同位素分布显示转化率>95%。MS/MS实验将2 Da质量损失定位于E16/E17修饰位点。去除PaaB、铁(外加EDTA螯合)或2OG均导致产物流失,证实PaaB为Fe(II)/2OG依赖性酶。值得关注的是,先进行胰蛋白酶消化再进行PaaB催化的产率显著高于先PaaB后胰蛋白酶消化的方式,提示PaaB反应可能发生于体内肽键切割之后。此外,缺少添加铁的体系中加入5 mM EDTA可完全消除活性,而缺少2OG时残留少量产物,被归因于PaaB共纯化的残余2OG。
**PaaB催化产物的结构表征。** 研究人员大量制备3-13mer并经HPLC纯化后进行NMR分析,其1H-NMR谱在5.12、5.21、6.18和6.36 ppm处显示四个特征峰,与天然潘托辛A的化学位移(5.12、5.21、6.15和6.35 ppm)高度一致。HMBC、NOESY和TOCSY实验完成了全结构归属,证实PaaB催化产物即为潘托辛A的成熟修饰结构。该产物与2a的简单1,2-脱氢产物不符:若在7位与8位发生1,2-脱氢,则相邻烯烃信号(6.36和6.18 ppm)和α次甲基(5.21 ppm)应存在TOCSY相关至酰胺质子的信号,而实际上仅有孤立烯烃(5.15 ppm)与E16酰胺质子存在TOCSY相关。因此PaaB催化的是脱氢伴随双键迁移,即净1,4-脱氢反应。
**讨论与结论。** Fe/2OG酶通常催化惰性C–H键的羟基化,但也已知多种替代转化。已有报道的Fe/2OG脱氢酶大多催化相邻碳中心的1,2-脱氢(如CarC、NapI、AsqJ、DfmD等),部分酶在复杂多环体系中伴随骨架重排(如SptF和PrhA),亦有羟基化伴随烯丙基双键迁移的实例。PaaB催化的净1,4-脱氢反应在Fe/2OG酶家族中尚属首次报道,是该酶家族催化多样性的新例证。机制上,PaaB催化可能经底物触发氧活化形成Fe(IV)-氧(ferryl)中间体,通过氢原子转移(HAT)启动反应;若初始HAT发生在2位,酰胺氮可能在电子转移步骤中提供杂原子辅助。本研究完整阐明了潘托辛A的生物合成途径:PaaP(1)经PaaA修饰生成双环骨架(2a),随后PaaB通过净1,4-脱氢和双键迁移完成成熟修饰(3),最终经两个肽键水解生成天然产物潘托辛A(3-3mer)。由于基因簇中无专用蛋白酶,肽键切割可能由PaaC或通用细胞蛋白酶完成。总体而言,本研究首次完整表征了潘托辛A两个生物合成酶的催化活性,解决了PaaA产物结构的长期歧义,揭示了Fe/2OG酶催化的新反应类型,具有重要的酶学与天然产物生物合成意义。