分娩后小鼠睾丸中 phoenixin-14 和 GPR173 基因及蛋白的表达及其对早期类固醇生成的影响
《The Journal of Steroid Biochemistry and Molecular Biology》:Postnatal expression of phoenixin-14 and GPR173 gene and protein in the mice testis and its effect on steroidogenesis in the early stage
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时间:2026年09月13日
来源:The Journal of Steroid Biochemistry and Molecular Biology 3.1
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摘要Phoenixin-14是一种神经肽,已被证实能够与GPR173结合并进行生物学功能活动。其表达存在于多种组织中,包括猪、人和大鼠的卵巢。然而,目前尚无关于它在大鼠出生后睾丸中的表达情况的信息。Phoenixin-14由Smim20基因编码。本研究显示,Smim20和Gpr1
摘要
Phoenixin-14是一种神经肽,已被证实能够与GPR173结合并进行生物学功能活动。其表达存在于多种组织中,包括猪、人和大鼠的卵巢。然而,目前尚无关于它在大鼠出生后睾丸中的表达情况的信息。Phoenixin-14由Smim20基因编码。本研究显示,Smim20和Gpr173的mRNA表达量从出生后第7天(PND7)开始下降,到出生后第65天(PND65)时达到最低。由于市售Phoenixin-14抗体的供应有限,我们在大鼠体内制备了自己的抗体,并通过ELISA、免疫组化和点印迹实验对其进行了验证。免疫组化结果显示Phoenixin-14和GPR173存在于生精小管和莱迪希细胞(Leydig cells)中。出生后第65天的莱迪希细胞中,GPR173的染色较强,而Phoenixin-14的染色中等。共定位研究进一步表明Phoenixin-14和GPR173在睾丸中共表达。这些结果证明,Phoenixin-14和GPR173的表达在出生后的发育过程中受到调控。Phoenixin-14和GPR173在生殖细胞中的存在暗示了它们可能在类固醇生成过程中发挥作用。此外,在出生后第28天至第65天期间,Cyp11a1和Cyp17a1基因的表达也有所增加,这与其他研究报道的睾酮水平升高相吻合。因此,Phoenixin-14和GPR173的变化可能也参与了睾酮的分泌调控。我们的体外实验表明,Phoenixin-14在两种不同剂量(10 nM和100 nM)下都能刺激睾酮分泌,其中较低剂量下的分泌量更高,并且类固醇生成相关基因(Cyp11a1、Cyp17a1、Star和Hsd17b1)的表达也增加。总之,睾丸中的Phoenixin-14/GPR173可能在不同的出生后阶段调节睾酮分泌。
引言
已知小鼠的精子发生始于出生期。在六周龄时,小鼠的附睾中已有具有功能的精子,从而确保了其早期的生殖能力。这是因为第一次精子发生发生在出生后第六周,即PND35 [1]。众所周知,体细胞与生殖细胞的相互作用对精子发生至关重要。此外,睾丸在出生后的发育阶段表现出特定的基因和蛋白质表达模式,这是精子发生的前提条件 [2]。
近年来,研究表明脂联素和肽类在生殖和生育能力中起着新的作用 [3]。Phoenixin(PNX)是一种新发现的与生殖相关的肽,包含两种活性异构体PNX-14和PNX-20 [4]。Phoenixin-14由Smim20(Small Integral Membrane Protein 20)基因编码的前体蛋白衍生而来 [5]。PNX在下丘脑产生,并直接影响垂体的性腺激素释放激素(gonadotrophs)[6]。初步研究表明,PNX通过调节kisspeptin、GnRH、GnRH受体、LH和发情周期的表达来影响下丘脑-垂体-性腺(HPG)轴 [4]。最初认为它是一种生殖肽,因为它能上调GnRH受体mRNA并增强GnRH受体的表达,从而促进雌性垂体细胞产生黄体生成素(LH)[7]。然而,后续研究表明,PNX可能在多种生理过程中发挥作用,包括抑制内脏疼痛、引发瘙痒、引起焦虑以及改善记忆保持 [4]。PNX受体是通过siRNA介导的GPR173敲低实验发现的,GPR173是一种被认为能与PNX结合的孤儿受体 [8]。
先前的研究显示,其他肽类及其受体(如apelin、apelin受体、visfatin、vaspin和GRP78)在小鼠睾丸中的表达会随着发育阶段的变化而变化 [9] [10] [11]。PND65代表完全成年期的小鼠;因此,这一阶段对于了解从青春期(PND42)到成年期的变化非常重要 [12,13]。此外,PNX-14已在雄性和雌性大鼠的多种组织中检测到其存在,包括下丘脑、垂体、大脑、小脑、肾上腺、卵巢和睾丸 [14]。然而,目前尚未有研究探讨小鼠出生后睾丸中PNX-14和GPR173的表达和定位情况。此外,市售的PNX-14抗体也不容易获得。因此,本研究重点制备了针对PNX-14的抗体,以实现对其在出生后不同发育阶段睾丸中的特异性检测和定位,并研究PNX-14和GRP173的基因表达。同时,本研究还探讨了PNX-14对睾丸类固醇生成的影响。
章节片段
动物饲养
本研究使用雌性Wistar大鼠和雄性瑞士白化小鼠。实验动物在标准受控条件下饲养,光照周期为12小时/天,温度为25±2°C,食物和水可自由获取。所有实验均遵循印度米佐拉姆大学动物伦理委员会(协议批准号 MZU/IAEC/2024–25/14)的指南进行。所有动物实验均符合ARRIVE标准。
Phoenixin-14抗体的验证
抗体的特异性通过三步法进行验证。首先使用免疫血清和预免疫血清进行ELISA测试。抗PNX-14肽的抗体滴定范围为1:50至1:4000,结果显示信号强度随稀释度增加而逐渐增强,最高稀释度为1:50时信号最强(见图1A)。同一动物的预免疫血清对PNX-14肽无结合反应。
讨论
本研究报告了小鼠出生后睾丸中PNX-14及其受体GRP173的表达和定位情况。由于市售抗体的来源有限,我们自行制备了针对PNX-14的抗体。我们使用与KLH结合的PNX-14在大鼠体内制备了这种抗体。ELISA结果显示,抗PNX-14血清的吸光度随剂量增加而降低;然而,同一动物的预免疫血清对PNX-14无结合反应。
作者贡献声明
Dombera K. Marak:撰写、审阅与编辑、初稿写作、数据可视化、验证、正式分析、概念构建。Guruswami Gurusubramanian:撰写、审阅与编辑、初稿写作、数据可视化、验证、正式分析、概念构建。Vikas Kumar Roy:撰写、审阅与编辑、初稿写作、数据可视化、验证、监督、资源管理、方法学设计、实验实施、正式分析、数据管理。
作者声明没有已知的财务利益或个人关系可能影响本文的研究结果。
Dombera K. Marak衷心感谢新德里的CSIR提供的资助(项目编号09/0864(20751)/2024-EMR-I)。同时,我们也感谢新德里DST-FIST为米佐拉姆大学动物学系提供的研究设施。
Dombera K. Marak|Guruswami Gurusubramanian|Vikas Kumar Roy
米佐拉姆大学动物学系,Aizawl, 米佐拉姆,796004,印度
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