人类iNeurons全基因组CRISPRi筛选鉴定与局灶性皮质发育不良相关的新型mTOR负调控因子基因

《Neurobiology of Disease》:Genome-wide CRISPRi screen in human iNeurons identifies novel negative mTOR regulator genes associated with focal cortical dysplasia

【字体: 大 中 小 】 时间:2026年09月15日 来源:Neurobiology of Disease 6.0

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  局灶性皮质发育不良(FCD)是局灶性癫痫的常见原因,通常由mTOR细胞信号通路中的脑嵌合突变引起。为了鉴定新的潜在FCD基因,研究人员开发了一种在人类神经元中进行的体外CRISPRi筛选,并使用基于FCD生物标志物——磷酸化S6核糖体蛋白

  
局灶性皮质发育不良(FCD)是局灶性癫痫的常见原因,通常由mTOR细胞信号通路中的脑嵌合突变引起。为了鉴定新的潜在FCD基因,研究人员开发了一种在人类神经元中进行的体外CRISPRi筛选,并使用基于FCD生物标志物——磷酸化S6核糖体蛋白(pS6)的FACS富集。利用全基因组(110,000个gRNA)和候选(129个gRNA)文库,研究人员发现了6个功能缺失显著升高pS6水平的新基因:LRRC4、EIF3A、TSN、HIP1、PIK3R3和URI1。对mTOR通路的进一步分析显示,只有其中两个基因PIK3R3和HIP1导致了整个AKT/mTOR/S6信号通路的过度磷酸化。重要的是,这两个基因的潜在致病变异已分别在一名FCD患者的切除脑组织中被报道,支持了该筛选的预测效度。在iNeurons中敲减这6个基因中的每一个均使mTOR信号对神经营养因子信号缺失(特别是GDNF)产生抵抗;即使没有GDNF,pS6水平仍与经GDNF刺激的对照组相当。因此,研究人员鉴定了在失去神经营养因子支持背景下的神经元mTOR信号负调控因子。这些数据扩展了可能在神经元中调控mTOR通路信号的基因集合,为在人类组织中鉴定的候选基因提供了生物学确认,并为研究切除的FCD组织中的体细胞基因变异提出了额外靶点。使用iNeurons鉴定新的mTOR调控因子也凸显了在疾病相关细胞类型中进行遗传筛选的重要性。
局灶性皮质发育不良(FCD)是局灶性癫痫的常见原因,其中FCD II型以皮质神经元分层紊乱、神经元肥大或畸形以及mTOR通路下游S6核糖体蛋白磷酸化(pS6)升高为特征。近年来,FCD II型标本中已发现mTOR信号调控基因的嵌合变异,但由于变异等位基因分数低、外周组织难以检出,且良性体细胞变异丰富,从患者组织中鉴定新FCD基因极其困难。为此,研究人员假设部分未获遗传诊断的FCD病例携带未知mTOR/pS6调控基因的体细胞突变,并以人诱导多能干细胞(iPSC)来源的诱导神经元(iNeuron)和CRISPR干扰(CRISPRi)技术建立了体外筛选平台,以pS6为生物标志物,通过荧光激活细胞分选(FACS)鉴定候选基因。该筛选未采用营养剥夺条件,并聚焦负调控因子,与既往在永生化细胞中的mTOR筛选不同。

研究人员使用KN-5 iPSC系,通过稳定整合多西环素诱导的KRAB-dCas9和NGN1/2生成CRISPRi iNeuron。先用覆盖已知mTOR调控因子的测试文库确认筛选可行性,再进行全基因组(110,000个gRNA)和候选(129个gRNA)文库筛选。在pS6-high细胞中富集的gRNA多为已知负调控因子基因如DEPDC5、TSC1、PTEN,而在pS6-low中富集的为MTOR等正调控因子。鉴定出6个敲减后显著升高pS6的新基因:LRRC4、EIF3A、TSN、HIP1、PIK3R3和URI1。进一步通路分析显示,仅PIK3R3和HIP1导致AKT/mTOR/S6信号通路整体过度磷酸化;已报道各有1例FCD患者切除脑组织中含有这两个基因的潜在致病变异,支持筛选的预测效度。敲减这6个基因均使iNeuron的mTOR信号对GDNF缺失产生抵抗,即在无GDNF时pS6水平仍与GDNF刺激的对照组相当。这些结果说明,这些基因是在失去神经营养因子支持背景下神经元mTOR信号的负调控因子。

在技术方法上,研究主要采用了:CRISPRi系统(KRAB-dCas9)在转录起始位点附近抑制转录以实现基因敲减;慢病毒文库转导iNeuron,结合FACS分选pS6-high与pS6-low群体后行下一代测序(NGS)并计算log2富集;细胞内western(ICW)和常规免疫印迹验证蛋白表达与磷酸化水平;高含量共聚焦显微镜结合神经元胞体分割分析评估单个细胞pS6和胞体大小。样本来源方面,研究使用KN-5 iPSC系,未纳入独立患者队列,而是引用已发表的FCD患者脑组织测序数据进行变异验证。

结果部分:

3.1 CRISPRi iNeuron iPSC系生成。通过qRT-PCR和免疫印迹确认CRISPRi可高效敲减目标基因(如SMC1A蛋白下降86%),为筛选提供了可靠系统。

3.2 丢失DEPDC5表达增加S6磷酸化。在iNeuron中敲除DEPDC5或使用CRISPRi敲低均使pS6升高,表明该系统能重复出FCD II生物标志物的变化。

3.3 已知mTOR调节因子文库筛选。测试文库筛选后,已知负调控因子DEPDC5、TSC1、PTEN在pS6-high中富集,正调控因子RPS6KB1、MTOR在pS6-low中富集,中性对照接近均值,验证了筛选方法的特异性和敏感性。

3.4 全基因组和候选CRISPRi
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