《Journal of Agriculture and Food Research》:Enhanced antihyperglycemic effects of cowhide collagen peptides by the combination with Momordica charantia extract: AMPK–FoxO1 pathway engagement and gut microbiota remodeling
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摘要专业翻译
牛皮胶原蛋白肽(collagen peptides, CP)与苦瓜提取物(Momordica charantia extract, MCE)通过静态猝灭和疏水相互作用形成非共价复合物。CP–MCE复合物提高了CP的热稳定性及消化后的肠道生物活性。
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牛皮胶原蛋白肽(collagen peptides, CP)与苦瓜提取物(Momordica charantia extract, MCE)通过静态猝灭和疏水相互作用形成非共价复合物。CP–MCE复合物提高了CP的热稳定性及消化后的肠道生物活性。在HFD/STZ诱导的2型糖尿病(T2DM)小鼠中,CP–MCE降低了空腹血糖并改善了葡萄糖耐量。CP–MCE增加了肝脏p-AMPK表达,降低了FoxO1/PEPCK水平,并提高了肝糖原含量。CP–MCE还调节了T2DM小鼠的肠道菌群和盲肠代谢物谱。
论文解读
一、研究背景与科学问题
胶原蛋白肽(collagen peptides, CP)是从动物皮肤、骨骼和软骨中提取的低分子量寡肽,具有抗氧化、降血压和抗衰老等多种生物活性。已有研究表明,CP可通过抑制二肽基肽酶-IV(dipeptidyl peptidase-IV, DPP-IV)延长肠促胰岛素半衰期,从而参与血糖调节。然而,仅靶向DPP-IV往往不足以实现有效的高血糖控制。持续高血糖可促进活性氧(reactive oxygen species, ROS)过量产生,而抗氧化防御能力受损会进一步加重氧化应激,这一失衡可能促使胰腺β细胞功能障碍、胰岛素信号受损及肝脏葡萄糖代谢失调,从而加速2型糖尿病(type 2 diabetes mellitus, T2DM)的进展。此外,调节肠道碳水化合物消化是控制餐后高血糖的另一重要策略,α-淀粉酶催化膳食淀粉的初始水解,其抑制可有效减缓葡萄糖释放。
目前增强肽类生物活性的策略多集中于金属螯合,但金属离子在特定条件下可能促进羟基自由基生成和DNA损伤,存在安全隐患。因此,利用天然生物活性成分作为辅助因子成为更安全的选择。植物提取物富含多酚、黄酮、三萜和皂苷类化合物,具有抗氧化、调节碳水化合物消化酶及葡萄糖调节潜力,可能补充肽类的DPP-IV抑制活性。然而,肽与植物提取物之间的非共价相互作用如何影响CP的理化性质、消化稳定性及功能表现,此前研究有限。因此,研究人员制备了CP–MCE非共价复合物,系统评估其结构特征、模拟胃肠消化后的体外生物活性及对T2DM小鼠的抗高血糖效应,并探索肝脏葡萄糖代谢相关蛋白、肠道菌群和盲肠代谢物之间的关联。
二、研究设计与技术方法
研究人员从牛皮中提取胶原蛋白,经木瓜蛋白酶和复合蛋白酶依次酶解,收集分子量小于1 kDa的组分作为CP。在四种植物提取物(蓝李提取物、银耳提取物、桑叶提取物和苦瓜提取物)中,通过比较抗氧化活性和α-淀粉酶抑制活性筛选出MCE作为最佳配伍成分。主要关键技术方法包括:荧光光谱法结合Stern-Volmer方程和Van't Hoff方程分析CP与MCE的结合机制;AutoDock Vina分子对接模拟代表性肽段与苦瓜苷I的相互作用;傅里叶变换红外光谱(FT-IR)、差示扫描量热法(DSC)和扫描电子显微镜(SEM)表征复合物结构;体外模拟胃肠消化评估生物活性保留率。动物实验采用高脂高糖饮食联合链脲佐菌素(streptozotocin, STZ)诱导的T2DM昆明小鼠模型(购自中国农业科学院兰州兽医研究所实验动物中心),分为正常对照(NC)、糖尿病模型(DM)、二甲双胍阳性对照(MH)、CP组和CP–MCE组,灌胃4周后检测空腹血糖、口服葡萄糖耐量、肝脏氧化应激指标、肝糖原含量、组织病理学、Western blot蛋白表达、16S rRNA肠道菌群测序及盲肠内容物非靶向代谢组学。
三、研究结果
3.1 植物提取物抗氧化活性与α-淀粉酶抑制活性评估
在相同浓度(2 mg/mL)下,四种植物提取物的抗氧化能力均强于CP。其中MCE的DPPH自由基清除活性为CP的4.83倍,ABTS清除活性比CP高58.62%,羟基自由基清除活性比CP高85.35%,综合抗氧化性能最优。在α-淀粉酶抑制方面,四种植物提取物的抑制活性均高于CP,但差异未达统计学显著水平。基于上述结果,MCE被选为与CP配伍的候选成分。
3.2 CP与MCE的相互作用机制
荧光猝灭分析显示,随着MCE浓度增加,CP的荧光强度逐渐降低,在MCE浓度达到0.35 mg/mL时结合趋于饱和。Stern-Volmer分析表明Kq值符合静态猝灭特征(≥2×1010 M?1s?1),说明CP与MCE形成了非荧光复合物。结合位点数接近1,结合常数KA随温度升高而增大,ΔG为负值表明结合是自发的,ΔH和ΔS均为正值,提示疏水相互作用是驱动CP–MCE结合的主要作用力。分子对接结果显示,代表性胶原肽段GPVGPPG和GPVG与苦瓜苷I之间的复合物主要通过氢键和疏水相互作用(包括π-烷基和π-σ相互作用)稳定。
3.3 CP–MCE复合物的结构表征
FT-IR分析显示,CP的酰胺I带和酰胺II带在加入MCE后分别从1631.35 cm?1和1537.53 cm?1移至1640.22 cm?1和1594.64 cm?1,O–H伸缩振动带也发生位移,表明CP的C=O、N–H和C–N基团参与了与MCE功能团的相互作用。DSC分析显示,CP–MCE的两个吸热峰温度(56.29 °C和95.22 °C)均高于CP(53.87 °C和85.09 °C),且ΔH2显著增加,表明MCE提高了CP的热稳定性。SEM观察显示,CP呈粗糙无定形碎片状结构,而CP–MCE形成具有中空褶皱的较大片状结构,提示CP与MCE的相互作用促进了小片段聚集重组为更大的连续结构。
3.4 模拟胃肠消化过程中的生物活性保留
体外模拟消化实验表明,胃消化阶段后CP和CP–MCE的活性保留率均保持在80%以上,二者无显著差异。肠消化阶段后,两种样品的生物活性保留率均显著下降,但CP–MCE的α-淀粉酶抑制活性、DPPH和ABTS自由基清除活性的保留率显著高于CP(P<0.05),表明MCE改善了CP在肠道环境中的消化稳定性。然而,肠消化后CP与CP–MCE的DPP-IV抑制活性保留率无显著差异,这可能与CP富含脯氨酸和精氨酸的氨基酸组成有关,进一步水解可产生含这些残基的短肽继续发挥DPP-IV抑制作用。
3.5 CP–MCE对T2DM小鼠的降血糖效应
给药4周后,CP、CP–MCE和MH组的空腹血糖分别较第0周降低37.93%、38.58%和51.68%(P<0.01),均显著低于DM组。口服葡萄糖耐量试验中,CP和CP–MCE组的OGTT曲线下面积(AUC)较DM组分别降低22.18%和25.95%,表明CP改善了葡萄糖耐量,MCE的联合使用进一步增强了血糖调节能力。
3.6 CP–MCE的抗氧化应激效应
与NC组相比,DM组肝脏总抗氧化能力(TAC)、谷胱甘肽过氧化物酶(GSH-Px)和超氧化物歧化酶(SOD)活性显著降低,丙二醛(MDA)水平显著升高(P<0.01)。CP干预部分逆转了这些变化,而CP–MCE较CP单独使用进一步增强了抗氧化酶活性并降低了MDA水平,表明MCE在体内增强了胶原蛋白肽的抗氧化应激能力。
3.7 CP–MCE对肝糖原含量的影响
DM组肝糖原含量显著低于NC组(P<0.01),而CP、CP–MCE和MH组的肝糖原含量均显著高于DM组(P<0.01)。CP–MCE较CP单独使用进一步增加了肝糖原含量。PAS染色显示,STZ诱导后肝脏和肾脏的糖原染色强度和分布减少,CP、CP–MCE和MH治疗后糖原沉积得到改善,其中CP–MCE和MH组恢复更为明显。H&E染色显示,DM组出现肝细胞肿胀、胞质空泡化和肝索排列紊乱,以及肾小管排列不规则和扩张等病理改变,CP–MCE治疗后这些异常得到缓解,肝肾功能形态得到较好保留。
3.8 CP–MCE对肝脏AMPK和PEPCK/FoxO1信号通路的影响
Western blot分析显示,T2DM小鼠的p-AMPK/AMPK比值较NC组显著降低,而CP、CP–MCE和MH组的p-AMPK/AMPK比值均显著高于DM组(P<0.05),表明这些干预促进了AMPK活化。DM组PEPCK表达较NC组显著升高,CP、CP–MCE和MH治疗减弱了PEPCK表达的升高,其中CP–MCE组的降低最为显著。同时,CP和CP–MCE也降低了FoxO1蛋白表达,提示抑制了FoxO1介导的糖异生基因转录激活。这些结果表明CP–MCE通过AMPK–FoxO1–PEPCK相关信号轴发挥抗高血糖作用。
3.9 CP–MCE对盲肠肠道菌群和代谢物的影响
16S rRNA测序显示,DM组的Firmicutes/Bacteroidetes(F/B)比值(3.86)高于NC组(3.04),而CP、CP–MCE和MH干预显著降低了F/B比值。属水平上,DM组Candidatus Arthromitus丰度升高、Anaerostipes显著减少,CP–MCE减弱了这些糖尿病相关变化。α多样性指数(Chao1、Shannon、Simpson和observed species)在DM组均显著低于NC组,CP–MCE提高了这些指数,表明微生物丰富度和多样性得到部分恢复。PCoA分析显示CP–MCE和MH处理样本向NC聚类方向偏移。
非靶向代谢组学共鉴定出89种显著差异代谢物。T2DM诱导后,皮质醇、醛固酮和脱氢表雄酮(DHEA)等类固醇激素相关代谢物显著升高,而CP/CP–MCE干预使其向NC水平恢复。抗坏血酸(维生素C)、δ-生育三烯酚和9,10-环氧十八碳烯酸在T2DM小鼠中显著降低,CP/CP–MCE减弱了这些降低。6-磷酸葡糖酸和甘露醇在T2DM小鼠中升高,CP/CP–MCE使其降低。微生物组–代谢组关联分析揭示了Firmicutes、Bacteroidetes、Proteobacteria等菌门与多种代谢物之间存在显著相关性。
四、讨论总结与研究结论
该研究表明,CP–MCE配方较CP单独使用表现出更强的抗氧化能力、α-淀粉酶抑制活性、热稳定性及模拟胃肠消化后的生物活性保留率。在STZ诱导的T2DM小鼠中,CP–MCE展现出优于CP的降血糖效果,并伴有葡萄糖耐量改善、肝糖原含量增加和肝脏氧化状态改善。这些效应伴随着肝脏p-AMPK/AMPK比值升高及FoxO1和PEPCK表达降低,支持AMPK–FoxO1–PEPCK相关信号通路的参与。CP–MCE治疗还与糖尿病相关盲肠菌群和代谢物谱改变的缓解相关。总体而言,CP–MCE可能代表一种有前景的T2DM血糖管理膳食配方。