猪繁殖与呼吸综合征病毒Nsp9劫持BNIP3介导的自噬为病毒复制复合体提供膜平台

《Journal of Virology》:PRRSV Nsp9 hijacks BNIP3-mediated autophagy to provide membrane platforms for viral replication complexes

【字体: 大 中 小 】 时间:2026年09月25日 来源:Journal of Virology 4.1

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  猪繁殖与呼吸综合征病毒(PRRSV)是威胁全球养猪业的主要病原体。病毒非结构蛋白9(Nsp9)具有RNA依赖性RNA聚合酶(RdRp)活性,是病毒复制复合体的核心组分,但其与宿主因子的相互作用仍不完全清楚。本研究中,研究人员将线粒体蛋白BCL2相互作用蛋白3(

  
猪繁殖与呼吸综合征病毒(PRRSV)是威胁全球养猪业的主要病原体。病毒非结构蛋白9(Nsp9)具有RNA依赖性RNA聚合酶(RdRp)活性,是病毒复制复合体的核心组分,但其与宿主因子的相互作用仍不完全清楚。本研究中,研究人员将线粒体蛋白BCL2相互作用蛋白3(BNIP3)鉴定为Nsp9的特异性结合伴侣。该相互作用由BNIP3的跨膜(TM)结构域与Nsp9的N端1–449区域介导。功能实验表明,BNIP3通过其TM结构域和LC3相互作用区(LIR)促进PRRSV复制。机制上,BNIP3将Nsp9招募至线粒体,Nsp9在此阻断自噬流并触发不完全线粒体自噬。该过程导致BNIP3相关自噬膜累积,这些膜作为病毒复制复合体组装的平台。此外,与单独敲低任一基因相比,同时敲低BNIP3和ATG7可进一步抑制病毒复制。挽救实验显示,BNIP3过表达可部分恢复ATG7缺陷细胞中的病毒复制,而ATG7过表达无法挽救BNIP3敲低所致的复制缺陷,表明BNIP3具有不依赖ATG7的平台功能。综上所述,研究结果揭示PRRSV劫持BNIP3以重编程自噬并生成复制所需的膜平台,这可能成为抗病毒药物研发的潜在靶点。

论文解读

一、研究背景与科学问题

猪繁殖与呼吸综合征(PRRS)是严重威胁全球养猪业的经济性疫病,可导致母猪繁殖障碍和仔猪致死性呼吸窘迫。其病原体猪繁殖与呼吸综合征病毒(PRRSV)属于动脉炎病毒科(Arteriviridae)的正链单股RNA病毒。尽管疫苗和生物安全措施已应用数十年,但由于病毒遗传变异性高且具备复杂的免疫逃逸策略,PRRSV仍难以有效控制。病毒非结构蛋白9(Nsp9)具有RNA依赖性RNA聚合酶(RdRp)活性,是病毒复制复合体的核心组分,对病毒RNA合成至关重要。已有研究表明Nsp9参与自噬体形成,但Nsp9与宿主因子的互作机制及复制复合体组装的分子基础尚不清楚。
BCL2相互作用蛋白3(BNIP3)是Bcl-2家族的促凋亡成员,也是公认的线粒体自噬受体。在缺氧或应激条件下,BNIP3通过其C端跨膜(TM)结构域定位于线粒体外膜,并通过LC3相互作用区(LIR)基序招募LC3,从而靶向受损线粒体进行自噬降解。已有报道表明BNIP3参与基孔肯雅病毒、肠道病毒71型、南方水稻黑条矮缩病毒等多种病毒的复制,但PRRSV是否利用BNIP3支持自身复制及其分子机制尚未阐明。
自噬是将细胞质成分运送至溶酶体降解回收的分解代谢过程。大量证据表明,包括PRRSV在内的许多病毒操纵自噬机制以促进自身复制。PRRSV感染诱导不完全自噬,表现为自噬体累积而降解效率低下,这一过程有利于病毒复制。然而,PRRSV如何精确利用自噬膜形成复制复合体的机制尚未确立,特别是Nsp9是否通过与特定自噬受体互作获得膜平台这一问题仍属未知。基于此,研究人员开展了本研究。

二、研究内容与主要结论

研究人员通过系统筛选发现BNIP3是PRRSV Nsp9的新型宿主互作蛋白,并阐明其分子机制:Nsp9通过其N端1–449区域结合BNIP3的TM结构域,被招募至线粒体外膜;Nsp9阻断自噬流并诱导不完全线粒体自噬,导致BNIP3相关自噬膜累积,这些膜作为病毒复制复合体的组装平台。BNIP3通过LIR基序结合LC3,该互作对病毒复制至关重要。BNIP3与ATG7协同但非冗余地支持病毒复制,BNIP3具有不依赖ATG7的平台功能。该研究首次揭示PRRSV这一正链RNA病毒利用线粒体自噬受体生成复制许可性膜平台的机制,将BNIP3鉴定为促进病毒复制的关键宿主因子,为抗病毒策略开发提供了新靶点。

三、主要技术方法

研究人员主要采用以下关键技术方法:使用Marc-145细胞系和原代猪肺泡巨噬细胞(PAMs,从4周龄仔猪肺灌洗分离获得)作为细胞模型,以PRRSV XHGD株为主要感染病毒,并以异源NADC30-like株进行跨毒株验证;通过共聚焦显微镜结合Pearson相关系数(Robs)分析蛋白共定位;采用免疫共沉淀(Co-IP)验证蛋白互作;使用LC3-GFP-mCherry和Mito-GFP-mCherry双荧光报告系统检测自噬流和线粒体自噬流;通过Western blotting、RT-qPCR和TCID50实验评估病毒复制水平;利用免疫电镜观察纳米尺度蛋白复合物的亚细胞定位;通过siRNA敲低和过表达进行功能研究。

四、研究结果

BNIP3特异性与PRRSV Nsp9互作。 研究人员将BNIP3与17种PRRSV蛋白共转染后进行共聚焦筛选,发现仅Nsp9与BNIP3显著共定位(Robs >0.50)。Co-IP实验证实外源表达的BNIP3与Nsp9特异性结合,且在PRRSV感染细胞中内源Nsp9与内源BNIP3共沉淀,异源NADC30-like株也得到一致结果,表明该互作在不同PRRSV毒株间保守。
BNIP3的TM结构域与Nsp9的N端1–449区域介导互作。 通过构建系列截短突变体,发现含TM结构域(164–183 aa)的BNIP3突变体与Nsp9强共定位(Robs >0.60),缺失TM结构域的突变体共定位显著减弱;Nsp9的N端区域(1–177 aa和178–449 aa)与BNIP3强共定位,而C端片段(450–643 aa)几乎无共定位。Co-IP进一步确认BNIP3 TM结构域与Nsp9 1–449区域直接结合。
BNIP3以TM结构域依赖方式正调控PRRSV复制。 BNIP3野生型(WT)过表达在8和10小时感染时间点显著增强病毒N蛋白表达、RNA水平和感染性病毒滴度,而TM结构域缺失突变体(ΔTM)过表达不仅不能促进复制,反而显著抑制病毒增殖。在Marc-145细胞和原代PAMs中敲低内源BNIP3均显著降低病毒N蛋白、RNA水平和病毒滴度。跨毒株验证表明BNIP3同样促进NADC30-like株复制。
Nsp9以BNIP3依赖方式诱导不完全线粒体自噬。 利用LC3-GFP-mCherry报告系统,Nsp9表达导致黄色斑点(自噬体)显著累积而红色斑点(自噬溶酶体)不变,表明Nsp9阻断自噬流而非单纯增加自噬体生成。BNIP3敲低后Nsp9诱导的黄色斑点显著减少。Mito-GFP-mCherry实验证实Nsp9同样以BNIP3依赖方式损害线粒体向溶酶体的递送,即诱导不完全线粒体自噬。
BNIP3是PRRSV诱导自噬流阻断所必需的。 在BafA1(巴弗洛霉素A1,自噬流抑制剂)处理实验中,PRRSV感染降低了NC组LC3-II对BafA1的响应,证实病毒阻断自噬流。BNIP3敲低后,感染细胞中LC3-II对BafA1的响应显著增强,伴随病毒N蛋白表达下降,表明BNIP3敲低部分解除病毒介导的自噬流阻断。雷帕霉素(自噬诱导剂)处理虽诱导LC3-II累积,但不能促进反而抑制PRRSV复制,进一步证实BNIP3介导的膜平台形成是PRRSV复制的限速步骤。
BNIP3以LIR依赖方式促进PRRSV复制。 BNIP3 WT过表达显著增强病毒N蛋白和RNA水平,而LIR基序突变体(LIRm,W18A/L21A)过表达无此效果。三色共定位分析显示,BNIP3 WT与Nsp9和LC3三者共定位,而LIRm保留与Nsp9的互作但完全丧失与LC3的关联,证明LIR基序特异性介导LC3结合而不影响BNIP3–Nsp9互作。
Nsp9经BNIP3被招募至线粒体形成复制平台。 三色共定位显示Flag-Nsp9、线粒体和内源BNIP3在同一亚细胞区域共定位。免疫电镜证实4-nm金颗粒标记的Nsp9和12-nm金颗粒标记的BNIP3主要分布于线粒体外膜且空间距离接近。PRRSV感染细胞中,病毒dsRNA(双链RNA,复制复合体标志物)、线粒体和BNIP3三者共定位,且EGFP-Nsp9与dsRNA、BNIP3和线粒体共定位,证明BNIP3相关线粒体膜是功能性病毒复制复合体的组装位点。
BNIP3与ATG7协同调控PRRSV复制。 单独敲低BNIP3或ATG7均显著降低病毒N蛋白和RNA水平,双敲低进一步抑制病毒复制。挽救实验中,ATG7过表达不能挽救BNIP3敲低所致的复制缺陷反而进一步降低病毒N蛋白水平,而BNIP3过表达可部分恢复ATG7敲低导致的复制缺陷。这表明BNIP3部分通过ATG7非依赖途径促进病毒复制,即提供复制复合体组装的膜平台,而ATG7无法补偿BNIP3缺失。

五、讨论与结论

讨论部分指出,本研究将BNIP3确立为PRRSV Nsp9与宿主自噬机制之间的核心分子连接器。BNIP3作为经典线粒体自噬受体,其正常功能是促进受损线粒体的自噬降解,但PRRSV Nsp9将其劫持用于非降解性目的——生成支持复制复合体组装的膜平台。Nsp9通过其N端1–449区域结合BNIP3的TM结构域,解释了Nsp9以BNIP3依赖方式被招募至线粒体的机制。TM结构域缺失突变体的显性负效应可能源于其竞争内源BNIP3的互作伙伴或隔离限制性宿主因子。LIR基序的不可或缺性表明BNIP3作为桥接分子,同时通过TM结构域结合Nsp9、通过LIR基序结合LC3,将病毒复制复合体锚定至自噬膜。BNIP3敲低增强BafA1诱导的LC3-II累积这一看似矛盾的现象,实为病毒自噬流阻断被部分解除的结果,功能上证明BNIP3被PRRSV劫持以主动阻断自噬流。BNIP3与ATG7的非冗余协同作用及ATG7过表达无法挽救BNIP3缺失,提示BNIP3具有ATG7非依赖的平台功能。雷帕霉素不能促进反而抑制病毒复制,支持BNIP3介导的膜平台形成而非单纯自噬体累积是PRRSV复制效率的关键决定因素。
研究结论为:PRRSV Nsp9劫持BNIP3介导的自噬以提供病毒复制所需的膜平台。Nsp9通过其N端区域结合BNIP3的TM结构域,将病毒复制复合体招募至线粒体膜;Nsp9阻断自噬流导致不完全线粒体自噬;BNIP3相关自噬膜作为复制复合体组装的平台;BNIP3通过LIR基序与LC3互作,该LIR依赖性互作对BNIP3促进病毒复制至关重要。该研究将BNIP3鉴定为PRRSV利用的关键宿主因子,并揭示了其膜平台功能,为理解PRRSV复制机制和开发新型抗病毒策略提供了新方向。
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